植物转录调控元件高通量分析技术ENTRAP-seq的突破性研究
作者及发表信息
本研究由Simon Alamos(加州大学伯克利分校、劳伦斯伯克利国家实验室)、Lucas Waldburger(加州大学伯克利分校)等8位作者共同完成,通讯作者为Patrick M. Shih。研究成果发表于*Nature Biotechnology*期刊,在线发布时间为2025年9月24日,DOI: 10.1038/s41587-025-02880-w。
学术背景
转录调控因子(transcriptional regulators)在植物生长、发育和环境响应中起核心作用,但其蛋白质水平的调控机制解析长期受限于缺乏高通量方法。传统方法(如随机诱变筛选)效率低下,且无法预测无序化调控域的功能。尽管STARR-seq、DAP-seq等技术已用于研究顺式调控元件(cis-regulatory elements),但跨物种(如酵母)的转录激活域(activation domains, ADs)研究存在偏差。因此,开发一种直接在植物细胞中高通量分析蛋白质编码变异的方法具有迫切需求。
研究流程与方法
1. ENTRAP-seq技术开发
- 核磁分选报告系统设计:研究者构建了基于核膜定位标签(outer nuclear envelope tag, ONETag)的报告系统。该标签由生物素受体肽(biotin acceptor peptide)、GFP和核膜靶向域(如番茄WIP蛋白C端)组成,通过农杆菌(*Agrobacterium tumefaciens*)介导的本氏烟草(*Nicotiana benthamiana*)瞬时表达系统递送。
- 单细胞表达控制:通过低密度农杆菌渗透(OD600=0.0025),确保单个细胞仅表达一个外源基因,避免交叉干扰。
- 核分选与测序:利用链霉亲和素磁珠分选表达ONETag的细胞核,通过高通量测序量化调控元件的富集程度,其富集比与转录活性正相关。
技术验证
植物病毒ADs挖掘
跨物种AD功能比较
转录因子工程化改造
主要结果与逻辑关联
- 技术验证阶段:核磁分选与荧光报告数据的高度一致性(图2f)确立了ENTRAP-seq的可靠性,为后续大规模筛选奠定基础。
- 病毒AD发现:病毒非调控蛋白中ADs的广泛存在(图4a-c)暗示病毒可能劫持宿主转录机制,同时为合成生物学提供新工具(如强效AD片段BKK70_GP5-020,活性媲美VP16)。
- 物种差异揭示:酵母模型对植物ADs的预测偏差(图5a)强调了植物内源性研究的重要性。
- CO工程化案例:AD突变库的成功筛选(图6d-f)证明ENTRAP-seq可用于理性设计TF功能。
结论与价值
1. 科学价值:ENTRAP-seq填补了植物蛋白质功能高通量分析的技术空白,首次实现直接在植物细胞中并行检测数千个调控元件。
2. 应用潜力:
- 农业:通过工程化TF(如CO等)调控作物性状(如开花时间)。
- 合成生物学:病毒来源的ADs为植物基因电路设计提供模块化元件。
3. 理论意义:揭示了病毒蛋白的“兼职”调控功能,挑战了传统ADs仅存在于调控蛋白的认知。
研究亮点
1. 技术创新:ENTRAP-seq将核磁分选与高通量测序结合,实现植物细胞中蛋白质功能的并行量化。
2. 资源贡献:发布1,105个病毒ADs和CO突变体库,为后续研究提供数据集。
3. 跨学科融合:结合深度学习(Paddle模型)、结构生物学(无序区分析)和机器学习指导的蛋白质设计。
其他价值
- 研究数据可通过DOI链接公开,代码和实验协议详见补充材料,支持方法复现与扩展应用。