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整合生理学、转录组学和代谢组学分析凡纳滨对虾在冷胁迫下的肝胰腺反应

期刊:comparative biochemistry and physiology - part d: genomics and proteomicsDOI:10.1016/j.cbd.2024.101196

《Comparative Biochemistry and Physiology - Part D: Genomics and Proteomics》2024年刊载的南美白对虾低温应激机制研究学术报告

一、研究团队与发表信息

本研究的通讯作者为Wenjun Shi与Xihe Wan,第一作者为Jianqiang Zhu(共同一作为Wenjun Shi),研究团队来自上海海洋大学国家渔业科学教育实验示范中心(中国上海)与江苏省海洋水产研究所(中国南通)。研究成果于2024年1月27日在线发表于Comparative Biochemistry and Physiology - Part D: Genomics and Proteomics(期刊编号:1744-117X),文章标题为《Integrated physiological, transcriptome, and metabolome analyses of the hepatopancreas of Litopenaeus vannamei under cold stress》。


二、学术背景与研究目标

科学领域:本研究属于水产动物生理学与分子生态学交叉领域,聚焦环境温度对甲壳类动物的生理与分子调控机制。

研究背景
1. 温度对水产动物的限制性作用:温度直接影响水生变温动物的代谢酶活性、有氧呼吸及信号转导等生化过程,是决定物种分布与生长性能的关键环境因子。南美白对虾(*Litopenaeus vannamei*)作为全球主要养殖虾类,其最适生长温度为25–35°C,低于18°C时停止摄食,12°C为致死临界温度。
2. 现有研究的不足:尽管已有单组学(如转录组或代谢组)研究探讨低温对虾类的影响,但多组学整合分析仍缺乏,且基因-代谢物协同调控网络的机制尚不明确。

研究目标
通过整合生理学、转录组学和代谢组学方法,系统解析南美白对虾肝胰腺在低温胁迫下的响应机制,揭示其增强耐寒性的调控通路,为虾类抗寒育种提供理论依据。


三、研究流程与方法

1. 实验设计与样本采集

  • 研究对象:600尾健康南美白对虾(平均体重9.06 ± 0.23 g),经病原检测(如白斑综合征病毒WSSV)确认无感染。
  • 温度梯度:从24°C(对照组CK)以2°C/2 h速率降温至12°C(T4),设置5个采样点(20°C/T1、18°C/T2、14°C/T3、12°C/T4),每个温度点稳定22小时后取样。
  • 样本处理
    • 组织学分析:肝胰腺固定于10%中性福尔马林,石蜡切片后HE染色。
    • 生理指标检测:测定甘油三酯(TG)、总蛋白(TP)、丙酮酸激酶(PK)、乳酸脱氢酶(LDH)等酶活性及抗氧化指标(MDA、SOD、CAT)。
    • 多组学分析:转录组(Illumina HiSeq 6000测序)与代谢组(LC-MS/MS)样本于液氮速冻后保存于-80°C。

2. 转录组分析

  • 测序与数据处理:9个文库共产生37.20–43.98 Mb原始数据,经Fastp过滤低质量 reads,Bowtie2比对至参考基因组(NCBI_GCA_003789085.1)。
  • 差异基因分析:DESeq2筛选差异表达基因(DEGs,|log2FC|>1且FDR<0.05),STEM软件进行时序表达模式聚类。
  • 功能注释:通过KEGG和GO数据库分析DEGs富集通路。

3. 代谢组分析

  • 样本提取:80 mg肝胰腺组织用甲醇/乙腈(1:1)提取代谢物,LC-MS/MS(Agilent 1290 Infinity LC与AB Sciex TripleTOF 6600联用)检测。
  • 数据分析:XCMS软件进行峰提取与注释,OPLS-DA模型筛选差异代谢物(DEMs,VIP≥1且p<0.05),KEGG通路富集分析。

4. 数据整合分析

  • 多组学关联:将DEGs与DEMs映射至KEGG通路,构建基因-代谢物互作网络。
  • qRT-PCR验证:随机选取10个DEGs(如CAT、HK、PK)进行表达量验证,β-actin作为内参。

四、主要研究结果

1. 低温胁迫下的生理与组织损伤

  • 能量代谢重编程
    • 糖酵解增强:PK与LDH活性在12°C时显著升高(p<0.05),而SDH(有氧代谢标志酶)活性下降,表明能量供应从有氧代谢转向无氧糖酵解。
    • 脂质消耗:TG含量随温度降低持续下降,12°C时达最低值(p<0.05)。
  • 氧化损伤与免疫抑制
    • MDA含量在14°C和12°C时显著上升(p<0.05),而SOD活性在18°C达峰值后骤降,CAT与GPX活性持续降低,表明抗氧化系统在极端低温下崩溃。
    • 免疫酶ACP与AKP活性显著降低(p<0.05),伴随肝胰腺组织结构破坏(如基底膜破裂、R细胞减少)。

2. 转录组与代谢组联合分析

  • 关键通路调控
    • 氨基酸代谢:脯氨酸(Proline)、丙氨酸(Alanine)和谷氨酸(Glutamic acid)含量显著增加,相关基因(如BCAT2、AGXT2)表达变化支持其参与渗透调节与能量供应。
    • 脂质代谢:不饱和脂肪酸(如油酸Oleic acid)积累,基因FASN与ACAC下调以减少能量消耗;磷脂酰丝氨酸(PS)合成基因PSS1上调,增强细胞膜流动性。
    • 甲基化调控:S-腺苷甲硫氨酸合成酶(SAM-S)在初期低温(24→18°C)表达上调,促进甲基化以增强耐寒性,但在12°C时甲基化水平下降。
  • 多组学网络:低温通过抑制胆汁酸转运基因SCP2导致牛磺胆酸(Taurocholate)积累,可能加剧肝胰腺损伤。

五、研究结论与价值

  1. 科学价值:首次通过多组学整合揭示了南美白对虾应对低温的分子-代谢协同网络,阐明了糖酵解激活、膜流动性调节及甲基化动态变化的核心机制。
  2. 应用意义:为虾类抗寒品种选育提供靶点基因(如BCAT2、PSS1),并为低温养殖管理策略(如饲料添加脯氨酸或牛磺酸)提供理论支持。

六、研究亮点

  1. 方法创新:结合生理指标、转录组与代谢组的三维分析框架,克服了单组学研究的局限性。
  2. 发现新颖性
    • 揭示了低温下甲基化水平的动态变化规律及其与耐寒性的关联。
    • 提出PS与不饱和脂肪酸协同维持膜流动性的新机制。
  3. 应用潜力:鉴定出多个可干预的代谢节点(如L-肉碱合成通路),为抗寒饲料开发提供依据。

七、其他有价值内容

  • 数据公开性:转录组数据已上传至NCBI SRA(编号PRJNA1010528),代谢组数据存于MetaboLights(MTBLS8646)。
  • 伦理声明:实验符合中国实验动物管理规范,所有虾类操作均在冰麻醉下进行。
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