本文档属于类型a(单篇原创研究论文),现按照学术报告形式进行撰写:
CRISPR-Cas9介导的域特异性碱基编辑筛选技术实现水稻ACC酶变体的功能评估
作者及机构
本研究由Xiaoshuang Liu(安徽农业大学农学院)、Ruiying Qin(安徽省农业科学院水稻研究所)等共同完成,通讯作者为Pengcheng Wei(安徽省农业科学院水稻研究所)和Dexiang Wu(安徽农业大学农学院)。论文于2020年1月15日发表于《Plant Biotechnology Journal》(Volume 18, Pages 1845–1847)。
学术背景
本研究聚焦植物分子育种领域,旨在解决传统突变育种技术(如自然突变或理化诱变)存在的随机性和方向性缺失问题。乙酰辅酶A羧化酶(Acetyl-CoA Carboxylase, ACCase)是脂肪酸生物合成的关键限速酶,其羧基转移酶(Carboxyltransferase, CT)结构域是除草剂(如芳氧苯氧丙酸酯类,APP)的主要作用靶点。尽管杂草中已发现ACC酶CT域的抗除草剂突变位点,但水稻(OsACC)中决定除草剂抗性的关键氨基酸尚未明确。研究团队通过开发基于CRISPR-Cas9的碱基编辑(Base Editing, BE)筛选平台,定向诱导OsACC CT域的定点突变,以期鉴定新型抗除草剂等位基因。
实验流程
1. sgRNA文库设计与构建
- 针对OsACC CT域的1653 bp编码序列,设计141条sgRNA,覆盖611 nt(EABE库)、788 nt(EBE3库)和393 nt(eCDA库)的可编辑窗口。
- 采用改良型碱基编辑器:增强型腺嘌呤碱基编辑器(EABE,实现A·T→G·C转换)、EBE3和eCDA(实现C·G→T·A转换)。其中EABE通过融合三重核定位信号(Nuclear Localization Sequence, NLS)优化编辑效率。
- 通过PhUc411载体构建sgRNA质粒库,转化大肠杆菌和农杆菌EHA105菌株。质粒库质量评估显示:sgRNA携带准确率>93.8%,64种独特sgRNA分布均匀(单sgRNA重复≤2次)。
水稻遗传转化与抗性筛选
突变位点鉴定与功能验证
主要结果
1. 新型抗性位点发现
- 首次在水稻中鉴定出W2125S突变(不同于杂草中保守的W2125C突变),扩展了ACC酶抗性等位基因库。
- I1879V突变(对应杂草I1781V)对水稻农艺性状无负面影响(株高、剑叶长度和结实率与野生型无显著差异),具备育种应用潜力。
基因型-表型关联分析
技术方法创新
结论与价值
1. 科学意义
- 建立了首个针对水稻ACC酶CT域的碱基编辑筛选平台,为植物蛋白质定向进化提供了范例。
- 揭示了OsACC抗性突变与生长发育的权衡关系,为靶标基因功能研究提供了新思路。
研究亮点
1. 首次将域特异性碱基编辑筛选技术应用于水稻ACC酶功能研究,实现从基因型到表型的系统性关联分析。
2. 发现新型抗性等位基因W2125S,突破了杂草中保守突变位点的认知局限。
3. 改良的EABE系统(NLS三重融合)与非典型编辑事件的成功捕获,为碱基编辑器设计提供了技术参考。
其他发现
研究团队指出,当前BE系统的编辑窗口限制(如eCDA仅覆盖393 nt)和转换类型单一(如缺乏G·C→C·G工具)是筛选效率的主要制约因素。未来通过开发广PAM识别、宽编辑窗口的多功能碱基编辑器,可进一步提升定向进化效率。