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基于tRNA:gRNA平台的高效CRISPR-Cas9基因编辑和基因沉默技术在热带假丝酵母中的应用

期刊:Microbiology SpectrumDOI:10.1128/spectrum.00059-22

该文档属于类型a(单篇原创研究论文),以下是针对该研究的学术报告:


CRISPR-Cas9基因编辑与沉默技术在热带假丝酵母(Candida tropicalis)中的高效应用研究

一、作者与发表信息
本研究由江南大学生物技术学院的Yujie LiLihua ZhangHaiquan Yang等团队完成,通讯作者为Xianzhong ChenWei Shen。研究发表于期刊Microbiology Spectrum(2022年5月/6月,第10卷第3期),标题为《Development of a gRNA expression and processing platform for efficient CRISPR-Cas9-based gene editing and gene silencing in Candida tropicalis》。


二、学术背景
科学领域:本研究属于合成生物学与代谢工程领域,聚焦于非模式酵母Candida tropicalis的基因编辑工具开发。
研究动机:热带假丝酵母是工业上重要的底盘细胞,可用于生产长链二羧酸、木糖醇等化合物,但其基因编辑工具匮乏,尤其是缺乏高效的向导RNA(gRNA)表达平台和CRISPR干扰(CRISPRi)系统。
背景知识:传统CRISPR-Cas9系统在热带假丝酵母中依赖RNA聚合酶II(Pol II)启动子,编辑效率低且操作复杂。此外,该酵母缺乏已知的Pol III启动子(如U6或tRNA启动子),限制了gRNA的表达。
研究目标:开发基于内源tRNA的gRNA表达平台(tRNA:gRNA),实现高效多基因编辑和基因沉默,并构建CRISPRi系统用于代谢调控。


三、实验流程与创新方法
1. 内源tRNA筛选与平台构建
- 研究对象:热带假丝酵母ATCC 20336基因组中的tRNA基因(通过tRNAscan-SE软件预测)。
- 样本量:从基因组中筛选出20种tRNA,最终选择无内含子的tRNA-Gly作为gRNA表达载体。
- 创新方法:设计tRNA:gRNA平台,利用tRNA的自剪切特性释放成熟gRNA(图1)。该平台包含tRNA-Gly序列及其上游300 bp的Pol III启动子区域。

  1. 单基因与多基因编辑验证

    • 靶基因:首先针对ura3(乳清酸核苷酸脱羧酶基因)进行单基因编辑,随后扩展至双基因(ura3gfp3)。
    • 实验设计:通过同源重组修复(HDR)引入终止密码子,并通过限制性酶切(EcoRI和HindIII)和测序验证编辑效率。
    • 结果:单基因编辑效率达100%,双基因编辑效率提升至71.0±4.8%(表1)。
  2. CRISPRi系统开发

    • 构建失活Cas9(dCas9):通过点突变(N10A和H840A)使Cas9失去剪切活性,保留DNA结合能力。
    • 靶向策略:针对外源基因gfp3(绿色荧光蛋白)和内源基因ade2(磷酸核糖氨基咪唑羧化酶)设计gRNA,分别靶向编码区(CDS)和启动子区。
    • 沉默效果:gfp3表达降至23.9±4.1%,ade2表达最低降至38.0±7.4%(图4, 图6)。
  3. 代谢工程应用

    • 靶基因erg9(角鲨烯合成酶基因),通过下调其表达以增强β-胡萝卜素合成。
    • 结果:erg9表达降至23.1±4.7%,β-胡萝卜素产量提升至0.42±0.02 mg/g(干重)(图7)。

数据分析:采用定量PCR(qRT-PCR)、流式细胞术(检测GFP荧光强度)和高性能液相色谱(HPLC,测定β-胡萝卜素含量)。


四、主要结果与逻辑链条
1. tRNA:gRNA平台的高效性:内源tRNA-Gly成功驱动gRNA表达,单基因编辑效率达100%,解决了Pol III启动子缺失的瓶颈。
2. 多基因编辑的突破:通过优化gRNA与供体的连接方式(图2b),双基因编辑效率显著提升,为多通路代谢工程奠定基础。
3. CRISPRi系统的灵活性:针对不同基因区域(CDS或启动子)的gRNA设计显示,靶向启动子区(如ade2)的调控效果更显著(图6b)。
4. 代谢调控的实证:erg9沉默显著提高β-胡萝卜素产量(图7b),验证了CRISPRi在代谢通路调控中的实用性。


五、研究结论与价值
1. 科学价值:首次在热带假丝酵母中建立tRNA:gRNA平台和CRISPRi系统,填补了非模式酵母基因编辑工具的空白。
2. 应用价值:为热带假丝酵母的代谢工程提供了高效、可逆的基因调控工具,适用于复杂生物合成路径的优化。
3. 方法论贡献:tRNA:gRNA平台具有普适性,可推广至其他缺乏Pol III启动子的微生物。


六、研究亮点
1. 创新技术:利用内源tRNA的自剪切特性实现gRNA的高效表达,避免了外源核酶的毒性风险。
2. 多基因编辑突破:通过tRNA:gRNA阵列实现多基因同步编辑,效率达71%。
3. 首个CRISPRi系统:首次在热带假丝酵母中开发dCas9介导的基因沉默工具,拓展了CRISPR技术的应用范围。


七、其他价值
本研究还探讨了gRNA靶向区域(CDS vs. 启动子)对沉默效果的影响,为后续基因调控设计提供了实验依据。此外,团队开发的sgRNAcas9软件(参考文献40)用于gRNA设计和脱靶分析,进一步提升了实验的可重复性。

(注:全文专业术语首次出现时均标注英文原词,如向导RNA(gRNA)、CRISPR干扰(CRISPRi)等。)

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