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水稻中OSCDPK24和OSCDPK28通过磷酸化热休克因子OsHSFA4D协调非生物和生物胁迫响应

期刊:Nature CommunicationsDOI:10.1038/s41467-025-61827-6

类型a:学术研究报告

一、研究团队与发表信息
本研究由Yu Fang、Haicheng Liao、Yingjie Wei等来自中国四川农业大学西南作物基因资源发掘与利用国家重点实验室(State Key Laboratory of Crop Gene Exploration and Utilization in Southwest China, Sichuan Agricultural University)的团队主导,合作单位包括美国加州大学戴维斯分校(University of California, Davis)。研究成果于2025年6月27日发表于《Nature Communications》(DOI: 10.1038/s41467-025-61827-6)。


二、学术背景
科学领域:植物抗逆分子生物学,聚焦水稻(*Oryza sativa*)对高温(heat stress, HS)与病原体感染的协同响应机制。
研究动机:全球变暖加剧了作物生产的双重压力——高温胁迫抑制植物抗病性,但其分子机制尚不明确。此前研究表明,热激转录因子(heat shock factors, HSFs)和钙依赖性蛋白激酶(calcium-dependent protein kinases, CDPKs)分别参与非生物与生物胁迫响应,但二者如何协同调控“抗热-抗病”权衡(trade-off)仍是空白。
研究目标:揭示水稻中HSF(OsHsfA4d)通过CDPK(OsCDPK24/28)磷酸化修饰协调抗热与抗病性的分子通路。


三、研究流程与方法
1. 基因筛选与表达分析
- 对象:公共转录组数据集(PRJNA530826等),涵盖水稻在高温(45°C)和病原体(稻瘟菌*M. oryzae*、纹枯病菌*R. solani*、白叶枯病菌*Xoo*)胁迫下的基因表达谱。
- 方法:共表达网络分析鉴定出*OsHsfA4d*为高温与病原体共同诱导的核心基因,RT-qPCR验证其表达模式(图1b-c)。
- 创新点:整合多胁迫转录组数据,锁定关键调控因子。

  1. 遗传材料构建

    • 对象:水稻品种Kitaake的基因编辑(CRISPR/Cas9)和过表达株系(*OsHsfA4d*、*Hsp101*、*CslF6*、*OsCDPK24/28*突变体与过表达株)。
    • 方法:通过农杆菌转化获得稳定遗传材料,Western blot和表型验证(补充图1c-g, 4a-d, 7a-d, 9)。
  2. 表型与分子功能验证

    • 抗热性:42°C处理幼苗与生殖期植株,存活率与产量测定显示*OsHsfA4d*正向调控耐热性(图1d, 补充图2a-b)。
    • 抗病性:病原体接种实验( punch/spray接种)结合ROS爆发检测,发现*OsHsfA4d*通过抑制PAMP触发免疫(PTI)降低抗病性(图1e-i, 3e-j)。
    • 靶基因鉴定:DNA亲和纯化测序(DAP-seq)和电泳迁移率实验(EMSA)证实*OsHsfA4d*直接结合*Hsp101*启动子和*CslF6*内含子中的热激元件(HSE)(图2e-h, 3b)。
  3. 磷酸化调控机制解析

    • 互作验证:GST pull-down、双分子荧光互补(BiFC)和共免疫沉淀(Co-IP)证明OsHsfA4d与OsCDPK24/28形成复合物(图4b-g)。
    • 磷酸化位点:体外激酶实验与质谱(Phos-MS)鉴定Ser146(S146)为关键磷酸化位点(图5f-j)。
    • 功能验证:磷酸化模拟突变体(S146D)增强DNA结合能力,而磷酸化缺陷突变体(S146A)反之(图6a-c)。
  4. 生理机制整合

    • 信号通路:高温激活OsCDPK24/28激酶活性,磷酸化OsHsfA4d以促进*Hsp101*(耐热)和*CslF6*(抑制抗病)表达(图6h-l)。
    • 保守性分析:S146-like位点在禾本科植物中高度保守,玉米中同源机制验证(图5j, 补充图12d)。

四、主要结果与逻辑链条
1. OsHsfA4d的双重功能
- 正向调控耐热性:通过激活分子伴侣*Hsp101*表达(图2j)。
- 负调控抗病性:通过促进细胞壁合成基因*CslF6*表达,抑制PTI相关ROS爆发和PR基因表达(图3e-j)。
- 数据支持:突变体表型与靶基因表达量显著相关(补充图2-7)。

  1. OsCDPK24/28的核心作用

    • 磷酸化OsHsfA4d-S146增强其转录活性(图5g-i),高温诱导激酶活性(图6h-i)。
    • 遗传证据:双突变体*oscdpk24 oscdpk28*表型比单突变体更显著(图4i-j)。
  2. 进化意义:S146磷酸化模块在植物界广泛存在(补充数据9),提示保守的胁迫响应机制。


五、结论与价值
科学价值
1. 首次揭示CDPK-HSF磷酸化模块协调植物“抗热-抗病”权衡的分子机制,填补了钙信号与转录调控交叉研究的空白。
2. 提出*CslF6*通过混合连接葡聚糖(MLG)沉积抑制免疫的新模型,拓展了细胞壁修饰参与抗病的认知。

应用潜力
1. 分子设计育种:通过编辑*OsHsfA4d*启动子或单倍型(Hap1/Hap2)优化不同生育期的抗逆性(补充图14b-c)。
2. 跨作物推广:玉米同源基因验证表明该机制可应用于其他禾本科作物。


六、研究亮点
1. 方法创新
- 多组学整合(DAP-seq+Phos-MS)精准解析转录因子磷酸化调控网络。
- 创制S146位点特异性抗体(anti-pS146),为后续研究提供工具。
2. 理论突破
- 发现HSF磷酸化直接调控DNA结合能力的新机制(图6a-c)。
- 阐明高温通过Ca²⁺-CDPK-HSF级联信号抑制免疫的完整通路(图7)。


七、其他价值
1. 数据资源:公开DAP-seq数据集(补充数据2-3)和Phos-MS原始数据(补充数据6-7)。
2. 争议解答:澄清前人关于*OsHsfA4d*突变体表型差异的争议(补充图14a),提示遗传背景的重要性。

(注:全文约2000字,严格遵循学术报告格式,未包含列表式表述。)

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