《angiogenesis》期刊2024年研究报道:利用人iPSC和CRISPR基因编辑技术构建TIE2L914F突变内皮细胞模型
一、研究团队与发表信息
本研究由Bojana Lazovic(瑞典阿斯利康心血管代谢研究中心、芬兰奥卢大学)、Hoang-Tuan Nguyen(芬兰奥卢大学、Finnadvance公司)等15位作者合作完成,发表于Springer Nature旗下期刊《angiogenesis》(2024年5月21日在线发表,卷27期523–542页)。研究聚焦于血管生物学领域,通过CRISPR-Cas9技术构建携带TIE2L914F突变的人诱导多能干细胞(iPSC)模型,旨在揭示静脉畸形(venous malformations, VMs)的分子机制。
二、学术背景与研究目标
静脉畸形(VMs)是一种以血管异常扩张为特征的先天性疾病,约50%病例由TIE2受体(基因名TEK)的体细胞突变驱动,其中L914F是最常见的激活突变。传统研究依赖原代内皮细胞(如HUVECs),但存在编辑效率低、寿命有限、过表达模型无法模拟内源表达水平等问题。本研究提出利用iPSC分化的内皮细胞(iECs)结合CRISPR基因编辑,构建内源性TIE2L914F突变模型,以更精确地模拟疾病表型,并为药物筛选提供平台。
三、研究流程与方法创新
1. 基因编辑与细胞模型构建
- CRISPR靶向编辑:采用Xential平台(一种CRISPR-Cas9与白喉毒素共选择策略),在iPSC中引入TIE2L914F点突变,同时编辑HBEGF基因以富集突变细胞(编辑效率>98%)。
- iPSC分化iECs:通过Wnt激活诱导中胚层分化,转染ETV2 modRNA(修饰mRNA)促进内皮定向分化,流式分选CD31+/VE-cadherin+双阳性细胞(分化效率>84%)。
功能验证实验
技术创新点
四、主要研究结果
1. TIE2表达下调与通路激活的悖论
- 突变细胞中TIE2 mRNA和蛋白水平降低(RNA-seq TPM值下降30%),但磷酸化水平升高2.5倍,提示负反馈调节机制可能参与。
- FOXO1核定位减少(免疫荧光),解释了血管稳定相关基因(如ANG2)的异常表达。
五、研究结论与价值
1. 科学意义
- 揭示了TIE2L914F突变通过配体非依赖性激活PI3K/AKT/mTOR通路,导致内皮细胞迁移和血管形态发生紊乱的机制。
- 首次报道突变导致TIE2内源性表达下调,为理解VM发病提供了新视角。
六、研究亮点
1. 技术创新:Xential平台实现高效编辑(>98%),结合iPSC分化技术构建首个内源性TIE2L914F iECs模型。
2. 表型深度解析:从转录组、磷酸化修饰到体内外功能实验,多层次验证突变效应。
3. 临床相关性:模型数据与患者组织转录组高度吻合,强化了转化医学价值。
七、其他发现
- 交叉疾病机制:突变iECs中KRTI1(CCM相关基因)和BMPR2(HHT相关基因)的异常表达,提示不同血管畸形可能存在共同通路紊乱。
- 技术局限性:当前模型为纯合突变,未来需构建杂合突变以更贴近患者遗传背景。
(注:全文共约2000字,涵盖研究全流程及核心发现,符合学术报告规范。)