这篇文档属于类型a,即报告了一项原创性研究。以下是针对该研究的学术报告:
作者及机构
本研究由Yuhang Fan、Wenchao Xu、Bao-Qing Gao等共同完成,通讯作者为Jia Chen(上海科技大学)。合作机构包括上海科技大学基因编辑中心、复旦大学附属儿科医院分子医学中心、中国科学院上海营养与健康研究所等。论文于2025年2月21日在线发表于Nature Biotechnology,标题为《Leveraging base excision repair for efficient adenine base editing of mitochondrial DNA》。
研究领域:线粒体DNA(mtDNA)碱基编辑技术。
研究动机:mtDNA突变与多种遗传性线粒体疾病(如Leigh综合征、MELAS等)相关,其中超过40%的致病突变为G-to-A或C-to-T,理论上可通过A-to-G编辑修复。然而,传统CRISPR碱基编辑器因向导RNA难以递送至线粒体而失效。2023年开发的TALEDs(转录激活因子样效应器连接脱氨酶)虽能实现mtDNA的A-to-G编辑,但其机制不明,效率受限。
科学问题:TALEDs如何实现A-to-G编辑?如何通过机制解析提升编辑效率与精准度?
研究对象:
- Split TALED(stTALED):包含分裂的ddDA(双链DNA特异性胞苷脱氨酶)和TadA8e(单链DNA特异性腺苷脱氨酶)。
- 细胞模型:野生型(WT)和基因敲除(KO)的293FT细胞(如UNG/SMUG1双敲、HMGB1敲除等)。
实验方法:
- 体外脱氨实验:纯化stTALED蛋白,检测其对双链DNA(dsDNA)或单链DNA(ssDNA)的脱氨活性。
- 关键发现:
- 依赖碱基切除修复(BER):ddDA介导的C-to-U脱氨触发BER通路,UDG(尿嘧啶DNA糖基化酶)切除尿嘧啶,形成AP位点,经HMGB1加工后暴露ssDNA区域,供TadA8e催化A-to-I脱氨。
- 旁观编辑(bystander editing)机制:若ssDNA形成于非TadA8e结合的TALE区域,TadA8e仍可结合另一条链的dsDNA区域,导致非目标位点编辑。
策略:
- 增强ddDA活性:用高活性变体ddDA6替换原始ddDA,构建stTALED6,编辑效率提升2-3倍。
- 融合hUNG:将人源UDG(hUNG)与TadA8e融合,进一步促进尿嘧啶切除,构建eTALEDs(如eTALED6),效率提升1.3-3.2倍。
验证实验:
- 多靶点测试:在ND1、ND5.1等mtDNA位点比较原始TALED与eTALEDs的编辑效率,eTALED6在ND1位点效率达72.45%(原始TALED为33.41%)。
- 单细胞分析:在A549和U2OS细胞中验证工具普适性。
工程化TadA8e:引入R111S或V28R突变缩小编辑窗口,构建eTALED6R。
结果:
- 减少脱靶:eTALED6R的mtDNA-wide脱靶编辑与原始TALED相当,但目标位点编辑效率保持48.88%(ND5.4位点)。
- 转录组安全性:RNA脱靶编辑数量显著降低(如eTALED6R的A-to-I变异数比原始TALED减少60%)。
目标突变:m.A13514G(导致Leigh综合征/MELAS的D393G氨基酸替换)。
结果:
- eTALED6R成功引入突变(效率48.88%),且纯目标等位基因占比达35.48%(原始TALED仅7.48%)。
- 功能验证:编辑后细胞线粒体耗氧率(OCR)下降,模拟疾病表型。
科学意义:
- 首次阐明TALEDs通过BER通路实现mtDNA编辑的分子机制,为优化基因编辑工具提供理论依据。
- 开发的eTALED6系列工具在效率、精准度和安全性上显著超越原始版本,填补了mtDNA碱基编辑的技术空白。
应用前景:
- 疾病建模:可高效引入致病突变,加速线粒体疾病机制研究与药物筛选。
- 基因治疗潜力:未来或可修复mtDNA突变,但需解决递送挑战。
(全文约2000字)