自然生物技术领域突破性进展:基于Tada-8e进化的小型高效胞嘧啶碱基编辑器开发研究
作者团队及发表信息: 本研究由哈佛大学Broad研究所的Monica E. Neugebauer、Alvin Hsu等14位研究者共同完成,通讯作者为David R. Liu教授。成果于2023年5月发表在《nature biotechnology》期刊(卷41,页673-685),DOI: 10.1038/s41587-022-01533-6。
学术背景: 在基因编辑领域,胞嘧啶碱基编辑器(CBEs, cytosine base editors)与腺嘌呤碱基编辑器(ABEs, adenine base editors)是两类重要工具。虽然CBEs能实现C•G到T•A的精准转换,但存在体积过大、脱靶活性高等局限。本研究源于一个重要发现:源于大肠杆菌tRNA脱氨酶Tada进化而来的ABEs具有体积小(166个氨基酸)、脱靶率低等优势。研究团队提出科学假设:能否通过定向进化将Tada-8e改造成高效胞嘧啶脱氨酶,从而创造兼具ABEs优势和C•G编辑能力的新型编辑器?
研究方法与流程: 1. 噬菌体辅助连续进化(PACE, phage-assisted continuous evolution)系统设计: - 创新性构建两个选择回路:回路1通过非模板链编辑(C6A7A8→T6A7A8)实现宽容性初选;回路2通过模板链编辑(TGG→终止密码子)实施严格负选择 - 采用改进的PANCE(非连续进化)策略进行初始进化,后续结合159小时PACE实验 - 使用RSF1030载体系统,宿主菌含突变质粒(MP)和辅助质粒(AP),通过调控gIII基因表达实现选择压力
主要发现: 1. 编辑器性能突破: - 进化获得的Tada-CDs变体展现出显著的底物选择性转变:在E. coli实验中,C•G-to-T•A编辑效率达90-97%,而A•T-to-G•C编辑仅1-3%,选择性提升>3,000倍 - HEK293T细胞中,Tada-CBEs在9个测试位点的平均峰值编辑效率(51-60%)超越传统BE4max(47%)和evoA(55%) - CRISPR冷冻电镜结构(PDB:6VPC)显示,26-28位突变位于活性位点附近loop区,改变了底物结合构象
结论与价值: 该研究通过定向进化成功将腺苷脱氨酶改造为高效胞嘧啶编辑器,创造了新一代Tada-CBEs。其科学价值体现在: 1. 方法学创新:建立”双重选择回路”进化策略,实现底物特异性的根本转变 2. 工具革新:提供目前体积最小(可比ABEs)、脱靶最低的CBE方案 3. 机制发现:揭示26-28位残基在决定脱氨酶底物选择中的关键作用 临床应用潜力包括: - 单AAV载体递送:得益于166个氨基酸的小体积 - 血液病治疗:在HSPCs中高效编辑BCL11A增强子 - HIV治疗:多重编辑T细胞CCR5/CXCR4共受体
研究亮点: 1. 首次实现腺苷脱氨酶向胞嘧啶脱氨酶的功能转化 2. 开发的Tada-CD系列兼具高活性(峰值效率达60%)与高选择性(C/A编辑比26.8-47.8) 3. 全面验证跨平台兼容性(spCas9、enME2-C Cas9、saCas9) 4. 建立10,638位点的全基因组编辑谱系分析模型
特别值得关注的是,研究者发现的V106W突变可进一步缩小编辑窗口至4-5bp,为需要单碱基精度的应用提供理想工具。该研究不仅开发了新型基因编辑工具,更为脱氨酶工程提供了可推广的进化范式。