学术研究报告:将IscB和Cas9转化为RNA引导的RNA编辑器
作者及发表信息
本研究由美国耶鲁大学分子生物物理与生物化学系的Chengtao Xu、Xiaolin Niu、Haifeng Sun、Ailong Ke团队,以及芝加哥大学化学系的Hao Yan和Weixin Tang团队合作完成,通讯作者为Ailong Ke(ailong.ke@yale.edu)。研究成果于2025年10月16日发表在期刊《Cell》(卷188,第1-15页)。
学术背景
RNA编辑是基因治疗领域的重要方向,因其不改变基因组DNA,可避免遗传性脱靶风险。目前主流的RNA编辑工具CRISPR-Cas13存在显著的细胞毒性问题,其旁切RNA切割活性会非特异性降解宿主mRNA,限制临床应用。IscB是Cas9的进化祖先,属于IS200/605转座子家族的RNA引导内切酶,具有超紧凑结构(约为Cas9的1/3大小),但其天然形式以DNA为靶标。本研究旨在通过工程化改造IscB,开发一种高效、低毒性的RNA编辑平台,并探索类似策略在Cas9中的应用。
研究流程与方法
1. IscB的RNA结合特性验证
- 实验设计:通过电泳迁移率实验(EMSA)验证野生型IscB对单链DNA(ssDNA)和RNA(ssRNA)的亲和力,发现其虽能结合ssRNA,但更偏好双链DNA(dsDNA)。竞争实验表明,dsDNA可完全抑制ssRNA结合。
- 关键发现:IscB的靶标相邻基序(TAM)相互作用域(TID)是DNA结合的关键,删除TID(构建ΔTID突变体)可完全消除DNA结合能力,同时保留ssRNA结合活性(解离常数Kd=29 pM)。
工程化改造:构建r-IscB
RNA编辑应用验证
Cas9的RNA编辑器转化
主要结果与逻辑关联
- 核心发现:TID/PID的删除或破坏可解除IscB/Cas9的DNA结合限制,激活其RNA靶向能力。r-IscB在剪接调控、转剪接和碱基编辑中均优于Cas13,且无细胞毒性(Cas13处理组24小时内细胞存活率显著下降)。
- 数据支持:单分子结合实验(图2g)、qPCR定量(图3c)、RNA-seq转录组分析(图5h)等证实r-IscB的高效性和特异性。例如,在ADARB1靶向实验中,差异表达基因富集于RNA剪接通路,而非脱靶效应。
结论与价值
1. 科学价值:揭示了IscB/Cas9的RNA编辑潜能,提出“结构域删除”普适性策略,为CRISPR工具开发提供新范式。
2. 应用价值:r-IscB的小尺寸(<500 aa)适合AAV载体递送,其长时程结合特性(半衰期37分钟)支持单次给药长效治疗。例如,DMD的转剪接策略可一次性修复多种突变,简化临床开发流程。
3. 临床意义:规避Cas13的毒性问题,为显性负性疾病(如PKM2过表达癌症)和隐性遗传病(如DMD)提供安全治疗方案。
研究亮点
- 创新性方法:首次通过TID删除实现IscB向RNA编辑器的转化,并拓展至Cas9家族。
- 性能优势:r-IscB的编辑效率(如转剪接40.9%)和特异性(种子区错配敏感度)超越Cas13。
- 多场景适用性:覆盖剪接调控、碱基编辑、RNA切割等多种应用,且兼容AAV递送。
其他价值
研究还发现,Cas9d的PID删除变体在RNA靶向中表现优异,为超紧凑RNA编辑器开发指明方向。团队已通过Addgene共享质粒资源,推动领域发展。
(注:文中术语首次出现时标注英文,如“靶标相邻基序(TAM)”“腺苷-to-肌苷(A-to-I)编辑”等。)