单细胞全基因组测序新突破:基于数字微流控的Digital-WGS平台
作者及发表信息
本研究由厦门大学化学化工学院化学工程系、化学生物学系的阮庆宇、阮卫东、林晓烨、王洋、邹芬香、周雷吉、朱志、杨朝勇(通讯作者)等合作完成,发表于*Science Advances*期刊2020年12月9日的第6卷第50期(DOI: 10.1126/sciadv.abd6454)。
研究领域:单细胞基因组学(single-cell genomics)与微流控技术(microfluidics)。
研究动机:单细胞全基因组测序(whole-genome sequencing, WGS)是解析细胞间基因组异质性的关键技术,但现有方法存在样本制备复杂、扩增偏倚高、外源DNA污染等问题。传统全基因组扩增技术(whole-genome amplification, WGA)如多重置换扩增(multiple displacement amplification, MDA)虽广泛应用,但受限于指数扩增导致的覆盖不均和错误率高等缺陷。
研究目标:开发一种自动化、高效、低偏倚的单细胞WGS样本制备平台——Digital-WGS,通过数字微流控(digital microfluidics, DMF)技术实现单细胞捕获、裂解、扩增的全流程集成,提升测序数据的均一性和准确性。
核心创新:
- 蝴蝶结构(butterfly structure):结合流体动力学陷阱与表面润湿性,通过亲水性虚拟微阱(hydrophilic virtual microwells)实现单细胞高效捕获(效率100%)。
- 数字微流控芯片:电极阵列设计包括试剂分配单元、细胞裂解区、扩增区等,通过电润湿(electrowetting-on-dielectric, EWOD)操控纳升级液滴(150 nL)。
实验验证:
- 细胞兼容性:测试K562(悬浮细胞)和MRC-5(贴壁细胞)等多种细胞系,捕获效率均达100%,且无细胞损伤(通过彗星实验验证DNA完整性)。
- 参数优化:沉降时间30秒、细胞浓度2.5×10³ cells/μL时捕获效率最佳。
关键改进:
- 体积效应:150 nL反应体系可提高模板DNA有效浓度,减少引物重复结合,降低扩增偏倚(CV=0.15)。
- 自动化流程:细胞裂解(碱性裂解液)、中和、MDA扩增(Repli-G单细胞试剂)均在芯片上完成,避免交叉污染(外源DNA占比仅0.2%)。
性能对比:
- 与传统MDA、液滴MDA(droplet MDA)、商业化微流控MDA(Fluidigm C1)相比,Digital-WGS的覆盖广度(35.5%)和均一性(Lorenz曲线最接近未扩增样本)显著提升。
实验设计:
- 低深度(0.75×)与高深度(10×)测序:使用Illumina HiSeq 4000平台,比对至GRCh37参考基因组。
- 变异检测:
- 拷贝数变异(CNV):52.4 kb分辨率下检测到最小150 kb的CNV,与批量样本一致性高。
- 单核苷酸变异(SNV):等位基因丢失率(allele dropout rate, ADO)仅5.2%,显著低于传统MDA(65.5%)。
算法支持:
- 动态分箱(dynamic binning)和HMMcopy软件用于CNV调用,samtools/bcftools用于SNV检测。
科学意义:
- 解决了单细胞WGS中扩增偏倚和样本损失的瓶颈问题,为基因组异质性研究提供了可靠工具。
- 数字微流控的自动化设计降低了操作复杂度,成本低至每样本0.07美元(传统方法20美元/细胞)。
应用前景:
- 罕见样本分析:如循环肿瘤细胞(CTC)、产前诊断样本。
- 高通量扩展:通过增加电极数量或结合组合索引(combinatorial indexing),可实现数千细胞并行处理。
(全文约2000字)