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通过去核间充质干细胞来源的微囊泡线粒体转移抑制和挽救高糖诱导的细胞衰老以促进慢性伤口愈合

期刊:Advanced ScienceDOI:10.1002/advs.202501612

学术研究报告:通过去核间充质干细胞来源的微囊泡线粒体转移抑制和逆转高糖诱导的细胞衰老以促进慢性伤口愈合

作者及发表信息

本研究由Zixuan Dong, Xiaobing Liu, Shichun Li, Xiaoling Fu(通讯作者)团队完成,作者单位包括华南理工大学生物医学科学与工程学院(School of Biomedical Sciences and Engineering, South China University of Technology)以及国家组织修复与重建工程研究中心(National Engineering Research Center for Tissue Restoration and Reconstruction)。研究成果于2025年发表在期刊Advanced Science(DOI: 10.1002/advs.202501612),文章标题为《Inhibition and Rescue of Hyperglycemia-Induced Cellular Senescence by Mitochondrial Transfer from Enucleated Mesenchymal Stem Cell-Derived Microvesicles for Chronic Wound Healing》。

研究背景

科学领域与问题
本研究属于组织工程与再生医学领域,聚焦糖尿病慢性伤口愈合障碍的机制与治疗。慢性伤口(如糖尿病足溃疡)因高糖微环境中细胞衰老(cellular senescence)的异常积累而难以修复,其中线粒体功能障碍是细胞衰老的核心驱动因素。既往研究表明,间充质干细胞(MSCs)可通过线粒体转移修复受损细胞,但天然MSCs的线粒体转移效率低,且存在免疫排斥、致瘤风险等问题。

研究目标
团队旨在开发一种新型递送系统——去核MSCs来源的微囊泡(mito@eumvs),通过封装功能性线粒体,靶向抑制和逆转高糖诱导的细胞衰老,并设计可溶性微针贴片(PVA-MN)实现透皮递送,最终促进糖尿病慢性伤口愈合。

研究方法与流程

1. mito@eumvs的制备与表征

关键步骤
- 去核处理:使用细胞松弛素B(cytochalasin B)和Percoll密度梯度离心法去除MSCs细胞核(去核率>90%),保留活性线粒体(通过Mito-Tracker Green标记验证)。
- 微囊泡制备:通过挤压法(extrusion)将去核MSCs通过不同孔径(0.4 μm、1.0 μm、3.0 μm)的聚碳酸酯膜,筛选最优尺寸。结果显示,3.0 μm微囊泡(mito@eumvs)的线粒体封装效率最高(75.9%),且能维持线粒体膜电位(TMRM检测)至少72小时。
- 结构验证:透射电镜(TEM)和超分辨显微镜(HIS-SIM)证实mito@eumvs具有完整膜结构,内部线粒体形态正常。

创新方法
- 尺寸优化:通过控制微囊泡尺寸(1-4 μm)最大化线粒体负载,避免天然外泌体(<200 nm)的容量限制。
- 去核设计:消除MSCs核DNA潜在风险,提升安全性。

2. 体外细胞衰老调控实验

研究对象
- 高糖诱导的衰老细胞模型:人脐静脉内皮细胞(HUVECs)和大鼠皮肤成纤维细胞,在35 mM葡萄糖培养基中培养5天诱导衰老(SA-β-gal阳性率显著升高)。

干预与检测
- 线粒体转移验证:用PK Mito Red标记mito@eumvs内的线粒体,PK Mito Deep Red标记受体细胞线粒体。共聚焦显微镜显示,mito@eumvs的线粒体可整合至受体细胞线粒体网络(共定位率>60%)。
- 衰老表型逆转
- SA-β-gal活性:mito@eumvs(40 μg/mL)处理5天后,衰老细胞比例下降50%以上(裸线粒体组仅降低20%)。
- 线粒体功能:ATP产量恢复至正常水平(化学发光法检测),ROS水平降低60%(DCFH-DA荧光探针)。
- 基因表达:衰老相关基因(p53、p16、p21)下调,促修复基因(TGF-β、VEGF)上调(qPCR验证)。

机制验证
- 线粒体抑制剂鱼藤酮(rotenone)可完全抵消mito@eumvs的抗衰老效果,证实其作用依赖线粒体功能恢复。

3. 可溶性微针(PVA-MN)递送系统

设计与性能
- 制备工艺:20%聚乙烯醇(PVA)溶液混合mito@eumvs,注入PDMS模具成型,针高600 μm,基底边长300 μm。
- 机械强度:20% PVA-MN可100%穿透猪皮肤,120秒内溶解于15% GelMA水凝胶(模拟真皮环境)。
- 稳定性:-80°C保存7天后,线粒体结构仍完整(Mito-Tracker Green荧光保留)。

4. 糖尿病大鼠压力性溃疡模型治疗

实验设计
- 动物模型:链脲佐菌素(STZ)诱导的糖尿病大鼠,背部制造压力性溃疡(n=6/组)。
- 干预组
- PVA-MN@eumvs(微针递送)
- ID@eumvs(皮内注射)
- PVA-MN(空白微针)
- 未处理对照组

结果
- 伤口愈合:PVA-MN@eumvs组21天伤口完全闭合,愈合速度显著快于其他组(p<0.001)。
- 组织学分析
- 表皮再生:H&E染色显示新生表皮厚度增加2倍(Masson染色验证胶原密度提升)。
- 血管生成:CD31免疫组化显示微针组血管密度较对照组高3倍。
- 衰老标志:SA-β-gal阳性区域减少70%,p53+细胞比例下降50%(多色免疫荧光验证)。

蛋白组学
- 差异表达蛋白:PVA-MN@eumvs组上调三羧酸循环酶(ACO1、SDHC)和抗氧化蛋白(GPX3),下调衰老相关蛋白(MMP9、caspase-6)。
- 通路富集:KEGG分析显示糖酵解、p53通路和PPAR信号通路被显著调控。

研究结论与价值

科学意义
1. 机制创新:首次证明人工微囊泡介导的线粒体转移可逆转高糖诱导的细胞衰老,提出“线粒体-衰老-伤口修复”轴的治疗靶点。
2. 技术突破:mito@eumvs结合微针递送系统,解决了线粒体体内递送的稳定性与效率问题。

应用价值
- 为糖尿病慢性伤口提供无细胞治疗(cell-free therapy)新策略,避免干细胞疗法的伦理和安全性问题。
- 微针贴片设计适合临床转化,可实现患者自我给药。

研究亮点

  1. 多尺度递送系统:从亚细胞(线粒体)到器官(皮肤)水平的递送方案一体化设计。
  2. 跨学科方法:整合了细胞生物学(衰老模型)、材料科学(微针)、和蛋白质组学(label-free定量技术)。
  3. 临床适配性:mito@eumvs冻存后活性稳定,满足规模化生产需求。

其他发现

  • 旁分泌效应:蛋白质组学显示mito@eumvs携带VEGFD、TIMP1等促修复因子,协同增强疗效。
  • 免疫调节:下调M1型巨噬细胞(iNOS+),上调M2型(Arg1+),改善伤口免疫微环境。

(注:全文数据均以均值±标准差表示,统计显著性通过ANOVA检验,p<0.05视为显著。)

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