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基于延伸和连接的qPCR扩增方法用于位点特异性N6-甲基腺苷修饰的无放射性标记检测

期刊:Angewandte ChemieDOI:10.1002/anie.201807942

学术研究报告:基于单碱基延伸和连接的qPCR扩增方法(SELECT)用于位点特异性N6-甲基腺苷(m6A)修饰的无放射性标记检测

一、作者与发表信息
本研究由北京大学化学与分子工程学院化学生物学系的Yu Xiao、Ye Wang、Qian Tang、Lianhuan Wei、Xiao ZhangGuifang Jia教授团队完成,发表于Angewandte Chemie International Edition(2018年,卷57,页码15995–16000)。

二、学术背景
N6-甲基腺苷(m6A)是真核生物mRNA中最丰富的转录后修饰,参与RNA代谢调控,但其单一位点检测技术存在局限性。现有方法如m6A-seq(依赖抗体免疫沉淀)分辨率低(约200核苷酸),而单核苷酸分辨率方法(如SCARLET)需放射性标记且耗时。本研究旨在开发一种无需抗体、无放射性标记的高灵敏度方法(SELECT),实现m6A位点的快速、定量检测。

三、研究流程与方法
1. 方法设计与优化
- 原理:SELECT基于m6A对DNA聚合酶单碱基延伸(Bst 2.0 DNA聚合酶)和连接酶(SplintR Ligase)的抑制作用,通过qPCR定量检测。
- 探针设计:两条带PCR接头的DNA探针(Up Probe和Down Probe)与目标RNA互补结合,留出m6A位点缺口。m6A阻碍探针延伸和连接,减少qPCR产物。
- 优化步骤
- 测试7种连接酶,选择SplintR Ligase(高效率和选择性)。
- 引入非修饰位点(N site,如x@6)作为内参,校正RNA起始量(图1a)。
- 建立单管反应体系,验证dNTP/dTTP均可用于延伸(图S4)。

  1. 模型RNA验证

    • 对象:42-mer合成RNA(oligo1和oligo2),含m6A或未修饰A位点。
    • 结果
      • SELECT可区分m6A与A,ΔCt达7.6循环(oligo1,GGACU序列)(图1b)。
      • 凝胶电泳(PAGE)证实选择性(图1c)。
      • 线性关系验证:混合不同比例m6A/A RNA,2^ΔCt与m6A比例呈线性(R²>0.99)(图1d)。
  2. 生物学样本应用

    • FTO辅助去甲基化:用重组FTO蛋白处理细胞RNA(Hela/HEK293T),去除90% m6A(图2b-c),结合SELECT验证已知位点:
      • 28S rRNA:m6A4190位点(图2d)。
      • lncRNA MALAT1:m6A2515、m6A2577、m6A2611位点(ΔCt与SCARLET测得修饰分数一致)(图2e)。
      • mRNA H1F0:预测位点m6A1211(3’UTR)被证实(图2f)。
    • 定量分析:以合成RNA为标准曲线,测定MALAT1 m6A2515位点修饰分数为0.636±0.027(图3)。
  3. 功能研究

    • CRISPR/Cas9敲低METTL3
      • 杂合细胞(METTL3+/−)中MALAT1 m6A2515修饰显著降低(图4d),证实该位点为METTL3靶点。
      • Western blot和UPLC-MS/MS验证METTL3蛋白减少及总m6A水平下降(图4b-c)。

四、主要结果与逻辑链
1. 方法学验证:模型RNA实验证明SELECT可区分m6A/A,灵敏度达0.25 fmol(图S7),选择性196.7倍。
2. 生物学应用:FTO辅助SELECT成功鉴定rRNA、lncRNA、mRNA中的m6A位点,且与已知数据一致(如SCARLET)。
3. 功能机制:METTL3敲低实验揭示其对MALAT1特定位点的修饰功能,为m6A写入酶靶点研究提供工具。

五、结论与价值
1. 科学价值:SELECT是首个无需抗体/放射性标记的单碱基m6A检测方法,解决了现有技术(如m6A-IP-qPCR)分辨率低、SCARLET操作复杂的问题。
2. 应用价值
- 可定量检测低丰度RNA(如lncRNA),最低需0.2 ng polyA-RNA(约200细胞)。
- 兼容其他修饰(如m1A、2’-O-甲基化)检测(图S13),扩展了应用场景。

六、研究亮点
1. 创新方法:首次联合聚合酶延伸抑制和连接酶效率筛选,实现双重选择性。
2. 高效灵活:单管反应、3小时完成,适配常规qPCR仪。
3. 多场景验证:从合成RNA到细胞样本,涵盖rRNA/lncRNA/mRNA。

七、其他发现
SELECT可结合遗传学工具(如基因敲除)研究m6A代谢酶功能,为表观转录组学提供新策略。例如,证实METTL3对MALAT1 m6A2515的特异调控(图4),为后续机制研究奠定基础。

(注:全文未翻译的专业术语如“SCARLET”“UPLC-MS/MS”等保留原名称,关键方法名“SELECT”首次出现时标注为“单碱基延伸-连接qPCR法”)

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