学术研究报告:基于单碱基延伸和连接的qPCR扩增方法(SELECT)用于位点特异性N6-甲基腺苷(m6A)修饰的无放射性标记检测
一、作者与发表信息
本研究由北京大学化学与分子工程学院化学生物学系的Yu Xiao、Ye Wang、Qian Tang、Lianhuan Wei、Xiao Zhang及Guifang Jia教授团队完成,发表于Angewandte Chemie International Edition(2018年,卷57,页码15995–16000)。
二、学术背景
N6-甲基腺苷(m6A)是真核生物mRNA中最丰富的转录后修饰,参与RNA代谢调控,但其单一位点检测技术存在局限性。现有方法如m6A-seq(依赖抗体免疫沉淀)分辨率低(约200核苷酸),而单核苷酸分辨率方法(如SCARLET)需放射性标记且耗时。本研究旨在开发一种无需抗体、无放射性标记的高灵敏度方法(SELECT),实现m6A位点的快速、定量检测。
三、研究流程与方法
1. 方法设计与优化
- 原理:SELECT基于m6A对DNA聚合酶单碱基延伸(Bst 2.0 DNA聚合酶)和连接酶(SplintR Ligase)的抑制作用,通过qPCR定量检测。
- 探针设计:两条带PCR接头的DNA探针(Up Probe和Down Probe)与目标RNA互补结合,留出m6A位点缺口。m6A阻碍探针延伸和连接,减少qPCR产物。
- 优化步骤:
- 测试7种连接酶,选择SplintR Ligase(高效率和选择性)。
- 引入非修饰位点(N site,如x@6)作为内参,校正RNA起始量(图1a)。
- 建立单管反应体系,验证dNTP/dTTP均可用于延伸(图S4)。
模型RNA验证
生物学样本应用
功能研究
四、主要结果与逻辑链
1. 方法学验证:模型RNA实验证明SELECT可区分m6A/A,灵敏度达0.25 fmol(图S7),选择性196.7倍。
2. 生物学应用:FTO辅助SELECT成功鉴定rRNA、lncRNA、mRNA中的m6A位点,且与已知数据一致(如SCARLET)。
3. 功能机制:METTL3敲低实验揭示其对MALAT1特定位点的修饰功能,为m6A写入酶靶点研究提供工具。
五、结论与价值
1. 科学价值:SELECT是首个无需抗体/放射性标记的单碱基m6A检测方法,解决了现有技术(如m6A-IP-qPCR)分辨率低、SCARLET操作复杂的问题。
2. 应用价值:
- 可定量检测低丰度RNA(如lncRNA),最低需0.2 ng polyA-RNA(约200细胞)。
- 兼容其他修饰(如m1A、2’-O-甲基化)检测(图S13),扩展了应用场景。
六、研究亮点
1. 创新方法:首次联合聚合酶延伸抑制和连接酶效率筛选,实现双重选择性。
2. 高效灵活:单管反应、3小时完成,适配常规qPCR仪。
3. 多场景验证:从合成RNA到细胞样本,涵盖rRNA/lncRNA/mRNA。
七、其他发现
SELECT可结合遗传学工具(如基因敲除)研究m6A代谢酶功能,为表观转录组学提供新策略。例如,证实METTL3对MALAT1 m6A2515的特异调控(图4),为后续机制研究奠定基础。
(注:全文未翻译的专业术语如“SCARLET”“UPLC-MS/MS”等保留原名称,关键方法名“SELECT”首次出现时标注为“单碱基延伸-连接qPCR法”)