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通过恒化器培养进化工程改善巴斯德酵母麦芽三糖发酵动力学

期刊:Frontiers in MicrobiologyDOI:10.3389/fmicb.2017.01690

关于通过恒化器培养进化工程改良啤酒酵母Saccharomyces pastorianus麦芽三糖发酵动力学的学术研究报告

一、 研究团队与发表信息

本项研究的主要作者包括来自荷兰代尔夫特理工大学(Delft University of Technology)生物技术系的Anja Brickwedde、Marcel van den Broek、Jack T. Pronk和Jean-Marc G. Daran(通讯作者);来自荷兰喜力供应链全球创新与研究(Heineken Supply Chain, Global Innovation and Research)的Jan-Maarten A. Geertman和Niels G. A. Kuijpers;以及来自芬兰VTT技术研究中心(VTT Technical Research Centre of Finland Ltd.)的Frederico Magalhães和Brian Gibson。

该研究以“Evolutionary engineering in chemostat cultures for improved maltotriose fermentation kinetics in Saccharomyces pastorianus lager brewing yeast”为题,于2017年9月8日发表在学术期刊《Frontiers in Microbiology》(微生物学前沿)上,具体卷期为第8卷,文章编号1690。

二、 学术背景与研究目的

本研究属于食品微生物学,特别是酿造微生物学与工业微生物进化工程的交叉领域。研究的核心动机源于全球啤酒工业,尤其是拉格(Lager)啤酒生产,对提高生产效率的持续需求。拉格啤酒占全球啤酒产量的近90%,其发酵过程依赖于一种名为巴斯德酵母(Saccharomyces pastorianus)的天然杂交酵母。这种酵母是酿酒酵母(S. cerevisiae)和真贝酵母(S. eubayanus)的种间杂交体。

在酿造过程中,麦汁(Wort)中含有多种可发酵糖,其中麦芽三糖(Maltotriose)是含量第二高的糖(仅次于麦芽糖)。然而,许多工业巴斯德酵母菌株对麦芽三糖的发酵动力学通常较慢且不完全,这导致了发酵周期延长和糖分残留,阻碍了“高浓酿造”(High-Gravity Brewing)等工艺强化的进一步实施。高浓酿造通过提高麦汁初始糖浓度来增加产能和效益,但这对酵母的发酵性能,特别是对麦芽三糖的利用效率提出了更高要求。

由于消费者对基因改造(GM)生物在食品饮料中应用的担忧,传统的定向代谢工程方法在啤酒酵母改良中受到限制。因此,非转基因的“进化工程”(Evolutionary Engineering)或“适应性实验室进化”(Adaptive Laboratory Evolution, ALE)策略成为一种有吸引力的替代方案。该策略通过在受控的实验室条件下施加长期的选择压力,富集自发产生的、具有所需性状的突变体。

本研究的目的是:测试一种基于碳限制恒化器(Chemostat)培养的进化工程策略,旨在获得具有改进糖发酵动力学,特别是能够更快、更完全转化麦芽三糖的巴斯德酵母菌株。研究选用弗罗贝格(Frohberg)谱系的巴斯德酵母参考菌株CBS1483作为模型,旨在通过进化工程改善其对麦芽三糖的亲和力(Affinity),并评估进化菌株在实验室乃至中试规模(1000升)发酵中的性能,同时关注其是否对啤酒风味化合物谱产生负面影响。

三、 详细研究流程

本研究流程设计严谨,从实验室进化筛选开始,逐步验证到中试规模应用,并辅以机理探索和基因组分析,具体步骤如下:

1. 初始表型分析与进化策略制定: * 研究对象: 巴斯德酵母菌株S. pastorianus CBS1483。 * 实验方法: 首先在实验室规模的生物反应器和2升不锈钢圆筒发酵罐中,分别使用合成培养基(含麦芽三糖富集的糖混合物)和15°柏拉图(Plato)的工业麦汁进行厌氧分批培养,分析其糖消耗模式。 * 关键发现: 实验证实CBS1483菌株确实存在麦芽三糖发酵不完全的问题,尤其在低浓度下发酵速度显著下降。这为后续进化实验提供了明确的表型改进目标。研究者决定采用碳限制恒化器培养作为进化平台,因为在这种连续培养模式下,生长限制性底物(此处为麦芽三糖)的残留浓度会施加持续的选择压力,有利于富集对底物具有更高亲和力(即更低Ks或更高qS,max)的自发突变体。

2. 进化工程实施与突变体分离: * 研究对象: S. pastorianus CBS1483的四个独立平行进化群体。 * 实验方法: 在16°C、厌氧条件下,于碳限制恒化器中进行长期连续培养。稀释率(D)设定为0.05 h⁻¹。碳源为一种糖混合物(含2.5%葡萄糖、28.0%麦芽糖、42.0%麦芽三糖和26.4%更高聚糖)。选择压力在于,能够更有效地在低浓度下摄取麦芽三糖的突变体将具有更高的比生长速率,从而在培养物中逐渐占据优势。 * 流程细节: 培养持续约130代。定期取样监测培养物的光密度(OD660)、生物量干重以及代谢物(葡萄糖、麦芽糖、麦芽三糖、甘油、乙醇)浓度。当残留麦芽三糖浓度稳定在较低水平时,认为进化达到稳定。随后,从每个独立的进化培养物中通过平板划线分离单克隆菌株。 * 特殊方法: 本研究的关键创新方法在于利用恒化器对麦芽三糖利用效率进行定向进化筛选。这是一种非靶向、自发突变的筛选策略。

3. 进化菌株的表型验证(实验室规模): * 研究对象: 从四个进化群体中分别选取的一个代表性单克隆菌株(命名为IMS0493, IMS0495, IMS0507, IMS0508)及其亲本菌株CBS1483。 * 实验方法: * 分批培养验证: 在2升不锈钢圆筒发酵罐(Tall-tubes)中,使用15°柏拉图的工业麦汁进行静态发酵实验,比较进化菌株与亲本菌株的糖消耗和乙醇生成情况。 * 恒化器稳态比较: 将进化菌株IMS0493和亲本CBS1483分别在相同的碳限制恒化器条件下培养至稳态,精确比较其残留糖浓度、生物量得率等生理参数。 * 糖转运动力学分析: 使用放射性标记的¹⁴C-麦芽糖和¹⁴C-麦芽三糖,测定菌株的糖摄取动力学。通过测量不同底物浓度下的初始摄取速率,绘制Eadie-Hofstee图,计算最大摄取速率(Vmax)和米氏常数(Km)。 * 数据分析流程: 代谢物数据通过高效液相色谱(HPLC)分析。糖摄取动力学参数通过线性回归拟合Eadie-Hofstee图获得。使用未配对双样本学生t检验(Prism 4软件)评估数据组间差异的统计学显著性。

4. 基因组测序与拷贝数变异分析: * 研究对象: 进化菌株IMS0493和亲本菌株CBS1483。 * 实验方法: 对两个菌株进行全基因组测序(Illumina HiSeq2500平台)。由于巴斯德酵母是异源多倍体且高度非整倍体,识别单核苷酸突变极为困难,因此研究重点放在染色体拷贝数变异(CNV)分析上。 * 数据分析流程: 使用Magnolya软件工具估算染色体拷贝数。将测序读数比对到CBS1483的参考基因组上,通过覆盖深度(Coverage Depth)的变化来推断特定染色体区域的扩增或缺失。同时,构建了一个包含已知和推定的麦芽糖/麦芽三糖转运蛋白基因(如SeMALT1-4, ScMAL11/AGT1, ScMAL31等)以及作为对照的单拷贝基因的人工序列,通过比对读数的覆盖度来评估这些特定基因的拷贝数变化。

5. 中试规模发酵验证与啤酒品质分析: * 研究对象: 进化菌株IMS0493和亲本菌株CBS1483。 * 实验方法: 在1000升(1300升罐,装液量1000升)的不锈钢发酵罐中进行中试规模发酵实验,使用15°柏拉图的工业麦汁,模拟工业条件(包括接种量、温度程序、通风、锌添加等)。每个菌株进行独立的重复实验。 * 分析内容: 监测发酵过程中的糖度、糖分消耗和乙醇生成。对最终得到的“原酒”(Green Beer)和标准化至5% (v/v) 酒精度的瓶装啤酒进行全面的品质分析,包括:乙醇含量、pH值、高级醇(如丙醇、异丁醇、戊醇)、酯类(如乙酸异戊酯、乙酸乙酯)、双乙酰(Diacetyl)和2,3-戊二酮等风味化合物,以及残留的可发酵糖。

四、 主要研究结果

1. 进化工程成功筛选出表型改良菌株: * 恒化器进化结果: 四个独立的恒化器培养物在经历约80代后,残留麦芽三糖浓度均下降了约70%(例如,从约3.0 g/L降至约0.56 g/L),同时生物量和乙醇浓度分别增加了17%和13%。这表明进化压力有效地筛选出了能更有效利用麦芽三糖的突变群体。 * 单克隆菌株验证: 从进化群体中分离的单克隆菌株在麦汁分批发酵中均表现出比亲本菌株更优的性能。特别是菌株IMS0493,其最终残留麦芽三糖浓度比亲本CBS1483低3.7倍,差异具有统计学显著性(p=0.0011)。在合成培养基的恒化器稳态培养中,IMS0493的残留麦芽三糖浓度(0.68 g/L)也远低于CBS1483(2.41 g/L),证实了其更高的底物亲和力。有趣的是,进化菌株表现出麦芽糖与麦芽三糖的共利用(Co-utilization)现象,而亲本菌株则呈现典型的二次生长(Diauxic)模式。

2. 表型改良的生理机制是麦芽三糖转运能力的提升: * 糖转运动力学数据: 放射性标记摄取实验提供了关键的机理证据。进化菌株IMS0493与亲本CBS1483对麦芽糖的Vmax(约23 μmol/min/g干重)和Km(约3.6-3.9 mM)非常接近。然而,对于麦芽三糖,虽然两者的Km相似(约6.5-7.2 mM),但IMS0493的Vmax高达23.5 μmol/min/g干重,是亲本菌株(4.9 μmol/min/g干重)的4.75倍,且差异显著(p=0.03697)。这一结果明确表明,进化带来的表型改善主要源于麦芽三糖转运能力(Transport Capacity)的大幅提升,而非转运蛋白对底物亲和力(Km)的改变。

3. 进化伴随着显著的基因组结构变异: * 拷贝数变异(CNV)分析: 全基因组测序显示,进化菌株IMS0493发生了多处染色体拷贝数变化。最显著的是,包含部分真贝酵母(S. eubayanus)和酿酒酵母(S. cerevisiae)序列的染色体III(ChrIII)的大片段拷贝数从4份增加到了8份(即发生了扩增)。同时,染色体ScI, ScVIII, SeI, SeIX以及ScXIV右臂的一部分拷贝数有所减少。 * 关键基因拷贝数分析: 针对已知的麦芽糖/麦芽三糖转运蛋白基因的深度分析未发现其拷贝数有统计学意义上的显著变化。这意味着表型改良可能并非由这些已知转运蛋白基因的简单扩增所直接导致,而可能涉及更复杂的调控机制或未知转运蛋白基因的变异。

4. 中试规模验证证实工业应用潜力且不影响风味: * 发酵性能: 在1000升中试规模发酵中,进化菌株IMS0493的优势得以重现。其最终残留总可发酵糖浓度比亲本菌株低53%,其中麦芽三糖残留浓度降低了72%,差异显著。乙醇产量相应提高。 * 啤酒品质: 将啤酒标准化至相同酒精度(5% v/v)后进行分析。IMS0493酿造的啤酒中,总高级醇含量虽比亲本高9%,但仍符合拉格啤酒标准。最关键的是,双乙酰含量降低了40%(从23 μg/L降至14 μg/L),且低于20 μg/L的感官阈值,这是一个积极的品质改善。其他风味化合物(酯类、乙醛等)水平均符合标准。这表明进化工程在显著改善发酵性能的同时,并未对啤酒的整体风味谱产生负面影响。

五、 研究结论与价值

本研究成功证明,基于恒化器培养的进化工程是一种有效且实用的非转基因策略,可用于改良杂交、非整倍体的工业啤酒酵母菌株的特定性状。

科学价值: 1. 方法学验证: 为在复杂的多倍体工业酵母中应用进化工程提供了成功案例,表明即使在不清楚其完整遗传背景的情况下,也能通过施加适当的选择压力来定向改良特定工业表型。 2. 机理洞察: 明确了本研究中表型改善(麦芽三糖利用效率提升)的主要生理基础是转运能力(Vmax)的提高,而非底物亲和力(Km)的增强。这为理解巴斯德酵母糖代谢调控的复杂性提供了线索。 3. 基因组稳定性观察: 揭示了巴斯德酵母基因组在进化压力下的可塑性,观察到了大规模的染色体拷贝数变异。同时,研究也指出,在现有短读长测序技术下,在此类复杂杂交基因组中精确鉴定单核苷酸突变仍面临挑战。

应用价值: 1. 工业菌株改良新途径: 为啤酒工业提供了一种可接受的(非转基因)、高效的菌株改良方法,可直接用于开发发酵更快、更彻底、更适合高浓酿造的酵母菌株。 2. 提升生产效率与可持续性: 进化菌株IMS0493能够更完全地发酵麦芽三糖,意味着在相同原料投入下能产出更多乙醇(理论上可提升约7.4%的体积产率),或缩短发酵时间,从而提升生产效率和经济效益。 3. 保持产品品质: 研究首次在中试规模系统评估了进化工程菌株的酿造性能,并证实其生产的啤酒风味符合标准,甚至在某些方面(如降低双乙酰)有所改善,消除了对该方法可能损害产品风味的担忧,增强了其工业应用的可行性。

六、 研究亮点

  1. 策略创新性: 首次系统地将碳限制恒化器进化工程策略应用于改良拉格啤酒酵母的麦芽三糖发酵动力学,并贯穿了从实验室机理研究到中试规模验证的全流程。
  2. 研究系统性: 工作流程完整,从表型筛选、生理机制探讨(转运动力学)、基因组变化分析,到最终的中试规模发酵验证和全面的啤酒品质评估,构成了一个闭环研究,证据链坚实。
  3. 工业关联性强: 研究直接针对工业酿造中的核心痛点(麦芽三糖发酵不完全),并最终在接近工业生产的规模上验证了改良效果,证明了该基础研究成果具有明确的转化潜力。
  4. 发现的重要性: 不仅获得了性能改良的菌株,更重要的是揭示了在这种复杂杂交酵母中,表型进化可能与大规模的染色体结构变异相关,而非单个基因的简单突变,这加深了对工业酵母基因组进化机制的理解。

七、 其他有价值的内容

研究在讨论部分还指出了未来挑战:尽管通过短读长测序检测到了染色体拷贝数变异,但由于巴斯德酵母基因组的高度复杂性和异源性,确定导致表型改善的确切因果突变(可能是点突变、调控序列变异或未知基因的变异)仍然非常困难。作者展望,太平洋生物科学(Pacific Biosciences)或牛津纳米孔(Oxford Nanopore)等长读长测序技术的发展,将有助于解析单倍体型和等位基因,从而在未来更好地揭示此类进化实验背后的分子遗传学基础。这一观点指出了该领域未来技术发展的方向。

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