分享自:

AHL介导的群体感应驱动藻菌生物膜系统中微生物群落演替及代谢途径

期刊:Water ResearchDOI:10.1016/j.watres.2025.123702

本研究由华中科技大学环境科学与工程学院刘作成、曾婷等团队联合中央华中师范大学化学学院王金龙、北京工业大学彭永臻院士团队共同完成,成果发表于《Water Research》2025年第282卷。论文标题为《AHL-mediated quorum sensing drives microbial community succession and metabolic pathway in algal-bacterial biofilm system》,聚焦藻菌生物膜系统中群体感应(Quorum Sensing, QS)对微生物群落演替及代谢通路的调控机制。

学术背景

水体氮污染对生态系统构成严重威胁,传统硝化-反硝化工艺存在高能耗问题。近年来,厌氧氨氧化(Anammox)、部分亚硝化-厌氧氨氧化(PN/A)及藻菌共生系统因其低碳特性受到关注。藻菌共生系统通过微藻光合作用供氧,细菌降解污染物并释放CO₂反哺微藻,形成能量物质循环。然而,藻菌平衡的维持机制尚不明确,尤其是酰基高丝氨酸内酯(AHLs)介导的群体感应如何调控生物膜形成与功能。本研究旨在解析藻/部分亚硝化/厌氧氨氧化(A/PN/A)生物膜系统中AHLs驱动的微生物互作机制,为高效脱氮提供理论支撑。

研究流程

1. 系统构建与运行

研究分三阶段构建生物膜系统:
- Anammox阶段(1–35天):接种厌氧氨氧化污泥,无光照条件下培养;
- PN/A阶段(36–70天):添加部分亚硝化污泥,控制溶解氧(DO)0.4–0.8 mg/L;
- A/PN/A阶段(71–120天):引入微藻(Geitlerinema属),光照强度280 μmol/(m²·s),形成分层生物膜结构(外层藻类/好氧菌,内层厌氧菌)。

反应器为4.5 L序批式反应器(SBR),填充聚氨酯泡沫载体,温度25±2°C,水力停留时间20小时。每阶段末期采集生物膜样本,分析MLSS、EPS、血红素c(Heme c)及叶绿素a(Chl-a)等指标。

2. 分析方法

  • 水质监测:NH₄⁺-N、NO₃⁻-N、NO₂⁻-N浓度采用标准方法测定;
  • EPS组分:Lowry法测蛋白质(PNs),蒽酮法测多糖(PSS);
  • AHLs检测:通过固相萃取(SPE)结合LC-MS定量水相、EPS相和污泥相中8种AHLs;
  • 宏基因组测序:Illumina MiSeq平台分析微生物群落及功能基因;
  • 共现网络分析:基于Spearman相关性构建网络,计算负相关性、标准介数中心性等拓扑参数。

3. 创新方法

  • 分层生物膜培养技术:通过载体分层实现好氧/厌氧微环境分区;
  • AHLs时空分布解析:首次关联AHLs链长与溶解性差异在生物膜三相中的分布规律;
  • QS功能基因贡献度分析:结合KEGG数据库量化各属对QS基因的功能贡献。

主要结果

  1. 脱氮性能
    A/PN/A阶段总氮(TN)去除率>93%,无需外加碳源与曝气。微藻光合作用使系统CO₂理论负排放达1.35 kg CO₂/kg-N(表S4)。

  2. 微生物群落

  • 优势菌属:厌氧氨氧化菌(Ca. Brocadia,13.86%)、氨氧化菌(Nitrosomonas,6.37%)、微藻(Geitlerinema,2.88%);
  • 亚硝酸盐氧化菌(Nitrospira)丰度从PN/A阶段的0.29%降至0.25%,抑制NO₃⁻-N积累。
  1. 代谢通路基因
  • 厌氧氨氧化功能基因(hdh、hzs)在A/PN/A阶段丰度回升;
  • 反硝化基因(nirA)和氨同化基因(gltB/D)显著增加,促进NO₃⁻-N去除(图2b)。
  1. 共现网络特征
  • 负相关性从AMX阶段的36.07%升至39.38%,反映种间竞争增强;
  • 标准介数中心性提高至0.304,网络脆弱性降至0.028,显示藻菌共生提升系统稳定性(图3d–f)。
  1. AHLs调控作用
  • 短链AHLs(C4–HSL、C6–HSL)富集于水相,长链(C12–HSL)分布于EPS/污泥相;
  • C4–HSL(60.73 ng/L)促进亚硝酸盐积累,C12–HSL(27.22 ng/L)刺激厌氧氨氧化菌生长;
  • 3-氧代修饰AHLs(如3-oxo-C12–HSL)浓度增加17倍,表明微藻供氧强化QS信号传递(图4a)。
  1. QS功能基因
    Ca. Brocadia对QS基因贡献度最高(4.86%),Nitrosomonas(6.61%)和Geitlerinema(1.36%)次之,证实三者为核心信息交换枢纽(图4c)。

结论与价值

本研究揭示AHLs介导的群体感应通过调控微生物互作、代谢通路及网络稳定性,驱动藻菌生物膜系统高效脱氮。科学价值在于:
1. 阐明AHLs链长分布与功能分化的关联机制;
2. 提出微藻光合供氧优化QS信号传递的新途径;
3. 为低碳废水处理工艺设计提供理论依据。应用价值体现在:
- 无需外加碳源与曝气,降低能耗;
- 生物膜分层策略可推广至其他共生系统。

研究亮点

  1. 方法创新:首次整合AHLs时空分布分析与共现网络拓扑参数,量化QS对生物膜稳定性的影响;
  2. 发现新颖性:揭示C12–HSL促进藻菌生物絮体形成的分子机制;
  3. 工程指导性:证实分层生物膜结构可协调好氧/厌氧菌的氧需求矛盾。

其他价值

研究指出Lautropia(丰度<1.8%)对QS基因贡献超2%,提示低丰度菌可能在信号传递中起关键作用,为后续微生物功能挖掘提供方向。

上述解读依据用户上传的学术文献,如有不准确或可能侵权之处请联系本站站长:admin@fmread.com