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用于药代动力学-药效动力学建模的微流控芯片装置

期刊:Lab on a ChipDOI:10.1039/b917763a

关于“片上药代动力学-药效学模型微流控装置”研究的学术报告

本报告旨在向国内研究人员介绍一篇发表于《Lab on a Chip》期刊上的原创性研究论文。该研究由康奈尔大学(Cornell University)的Jong Hwan Sung, Carrie Kam以及Michael L. Shuler*(通讯作者)共同完成,并于2010年2月21日(第10卷第4期)正式发表,网络版先行于2010年1月5日发布。

一、 研究背景与目标

本研究隶属于生物医学工程与药物开发交叉领域,核心聚焦于利用微流控技术改进临床前药物毒性评估模型。传统的药物研发过程耗资巨大、耗时漫长,且临床阶段失败率高。一个重要原因在于,当前广泛使用的体外细胞模型(如多孔板静态培养)无法模拟人体内复杂的多器官相互作用及药物在体内的动态过程,即药代动力学(Pharmacokinetics, PK)。药代动力学描述药物在生物体内随时间变化的吸收、分布、代谢和排泄过程,而药效学(Pharmacodynamics, PD)则描述药物浓度与其产生的药理效应(如细胞死亡)之间的关系。两者结合形成的集成PK-PD模型,能更准确地预测给药方案下的药效时程。

研究团队此前已开发了“微尺度细胞培养模拟器”(microscale cell culture analog, MCCA),又称“芯片上的身体”(body-on-a-chip)。该装置基于生理药代动力学(Physiologically Based Pharmacokinetic, PBPK)模型,将代表不同器官的细胞培养在通过微流通道连接的独立腔室中,以模拟血流分布和多器官相互作用,用于基于PK的药物毒性测试。然而,当时的微流控装置普遍存在操作复杂(需要泵、易产生气泡)、组装繁琐(不利于多种细胞同时接种)等问题,限制了其被非专业用户的广泛应用。

因此,本研究设定了两个主要目标:第一,重新设计MCCA装置,旨在提升其易用性和操作简便性,通过分层设计和重力驱动实现无泵操作、避免气泡,并简化多细胞类型的接种流程。第二,首次将集成PK-PD建模方法与MCCA实验平台相结合,构建“片上PK-PD模型”,以定量分析抗癌药物5-氟尿嘧啶(5-Fluorouracil, 5-FU)及其调节剂尿嘧啶(Uracil)的联合效应,验证这种结合方法在提高药物毒性预测能力方面的价值。

二、 研究详细工作流程

本研究的工作流程可概括为四个主要部分:新型MCCA装置的设计与制备、装置性能验证与细胞培养、静态与动态条件下的药物毒性实验、以及PK-PD数学模型的构建与数据分析。

1. 新型MCCA装置的设计、制备与组装: 研究团队设计了一种多层结构的微流控芯片。核心包括两层:上层的PDMS(聚二甲基硅氧烷)流体通道层,其通道几何形状经过精确计算,以模拟人体中流向所选器官(肝、肿瘤、骨髓)的相对血流比例(分别为58%、18%、24%);下层的硅胶细胞培养腔室层,包含三个贯通孔,用于容纳封装在凝胶中的细胞。这两层被夹在有机玻璃顶板和铝制底板之间,中间还加入了聚碳酸酯基座和硅胶垫圈以确保密封。装置采用可逆密封方式,允许在组装前分别将不同细胞接种到各自的腔室中。这种分层设计是关键创新,它解决了在单个装置中同时接种多种细胞并随后密封的技术难题。装置的两个角落设有入口/出口,连接着PDMS制成的培养基储液池。

2. 装置操作、细胞培养与实验设置: 装置组装完成后,被倒置放置。通过向两个储液池中加入培养基,并利用重力驱动流动来实现培养基的循环。具体而言,将整个装置放置在一个可摇动的平台上,平台大约每3分钟改变一次倾斜方向,从而驱动培养基因重力差在储液池间往复流动,进而流经所有细胞腔室。这种设计消除了对外部泵的依赖,并利用气泡的浮力特性有效防止了其进入微流通道系统,解决了微流控中常见的棘手问题。 研究中使用了三种细胞系来模拟不同组织:代表肝脏的肝癌细胞系HepG2/C3A、代表结肠癌的肿瘤细胞系HCT-116、以及代表骨髓的成髓细胞系Kasumi-1。细胞被封装在两种不同的水凝胶中进行比较:一种是海藻酸盐(Alginate),另一种是基质胶(Matrigel)。封装好的细胞凝胶块被放入细胞培养腔室层对应的孔中,然后进行装置组装。 药物毒性实验分为两大场景:静态条件(对照组)和动态条件(MCCA实验组)。静态条件下,细胞被封装在凝胶中置于孔内,并浸泡在固定体积的培养基中,模拟传统培养。动态条件下,细胞在组装好的MCCA装置中接受循环培养基的灌注。实验测试了不同浓度(0, 0.1, 0.2, 0.5 mM)的5-FU,以及5-FU与尿嘧啶联合用药的效果。整个系统置于细胞培养箱中运行最多3天。实验结束后,拆卸装置,溶解凝胶回收细胞,通过台盼蓝拒染法测定细胞活力。

3. PK-PD数学模型的构建: 这是本研究的核心分析方法。团队构建了一个与三腔室MCCA装置结构对应的集成PK-PD数学模型。 * PK模型部分:基于质量平衡原理,为每个腔室(肝、肿瘤、骨髓)和培养基储液池建立常微分方程(ODEs),描述药物(5-FU和尿嘧啶)的流入、流出和在肝脏腔室中的代谢(米氏方程)。模型参数包括生理参数(各腔室体积、流速)和酶动力学参数(5-FU和尿嘧啶代谢的最大速率Vm、米氏常数Km、相互竞争的抑制常数Ki),这些参数来源于文献报道的人体生理数据、大鼠代谢速率及肝细胞蛋白含量等。 * PD模型部分:采用转运隔室模型(Transit Compartment Model) 来描述药物引起的细胞死亡动力学。该模型假设细胞需要经历一系列步骤(隔室)才能达到最终死亡状态,适用于模拟存在时间延迟的复杂药物效应(如化疗药物的细胞杀伤)。模型参数包括最大细胞杀伤速率(kmax)、达到半最大效应时的药物浓度(kc50)、细胞通过各阶段的速率(s)以及自然死亡率(kd)。 * 模型求解与拟合:首先,在静态条件下(无需PK模型),直接用不同浓度5-FU的细胞活力数据拟合出每种细胞系的PD模型参数。其次,在动态条件下,先运行PK模型,预测出MCCA装置中各腔室随时间变化的药物浓度曲线;然后将此浓度曲线作为输入,代入对应腔室的PD模型,再根据MCCA实验测得的细胞活力数据,拟合出动态条件下的PD模型参数(kmax, kc50, kd)。所有计算均使用MATLAB软件完成。

三、 主要研究结果

1. 装置性能验证结果: 重力驱动流动的流速与储液池液面高度差呈线性关系,验证了其可行性。使用荧光染料和荧光微球确认了流体通道层与细胞培养腔室层之间的密封性良好,无泄漏。在重力驱动循环下,三种细胞在装置中均能存活至少3天,活死染色显示细胞状态良好,但不同细胞系的活力存在差异(例如HCT-116活力接近100%,而Kasumi-1和HepG2/C3A较低),这初步揭示了细胞对微流控3D环境的适应性不同。若每天更换培养基,细胞可维持更高活力更长时间。

2. PK-PD模型构建与静态实验结果: 静态条件下的PD模型拟合结果与实验数据吻合良好(图4)。模型揭示了不同细胞系对5-FU敏感性的细微差别,例如HepG2/C3A细胞的活力下降速度较慢。拟合得到的参数(kmax, kc50, kd)为后续比较提供了基线。

3. 动态(MCCA)实验结果与PK-PD模型分析: 这是本研究最核心的发现。 * PK模型预测:由于尿嘧啶对5-FU代谢的竞争性抑制,在联合用药时,MCCA系统中5-FU的浓度能在72小时内保持相对稳定;而单独使用5-FU时,其浓度会因肝脏代谢而较快下降(图5a)。各腔室因停留时间短(100-240秒),能迅速与储液池达到平衡。 * 细胞响应差异:MCCA中的细胞响应与静态条件相比存在显著差异(图5b-d)。总体而言,细胞在动态条件下对5-FU更敏感。不同细胞类型之间的响应差异在MCCA中也更为明显:肿瘤细胞(HCT-116)和成髓细胞(Kasumi-1)对5-FU的敏感性远高于肝癌细胞(HepG2/C3A)。在无药条件下,不同细胞在MCCA中的适应性(表现为自然死亡率kd)也差异巨大,而在静态条件下则相似。 * PD参数比较:通过对比静态和动态条件下拟合的PD参数(表2),发现动态条件下细胞kc50值普遍更低,这表明在微流控环境中,细胞在更低的药物浓度范围内就表现出敏感性。此外,无论在静态还是动态下,肝癌细胞(HepG2/C3a)的kmax值较低或kc50值较高,证实其相对耐药,这与临床中5-FU的剂量限制性毒性是血液学毒性的观察一致。

4. 尿嘧啶调节剂效应及水凝胶影响: 实验发现,当细胞封装在海藻酸盐中时,联合使用尿嘧啶并未显著增强5-FU的细胞毒性(图6a)。而当细胞封装在基质胶中时,尿嘧啶明显增强了5-FU对肿瘤细胞和成髓细胞的杀伤效果(图6b)。研究团队通过数学模型模拟对这一现象提出了合理解释:他们假设海藻酸盐可能降低了封装细胞的代谢活性。模拟显示(图7),当肝脏代谢活性正常时,不加尿嘧啶会导致5-FU被快速代谢清除,因此联合用药效果显著更强;而当代谢活性降低三倍时,5-FU代谢变慢,加或不加尿嘧啶对系统内5-FU浓度的影响变小,从而导致细胞活力差异不显著。这暗示水凝胶的化学和机械性质可能影响细胞的生理功能,特别是肝脏细胞的代谢能力。

四、 研究结论与价值

本研究成功开发了一种基于集成PK-PD模型的、用户友好型微流控装置(MCCA)。通过分层设计和重力驱动,显著提升了装置的易用性、可靠性和可操作性。更重要的是,研究首次将数学PK-PD建模与MCCA体外实验平台紧密结合,实现了“片上PK-PD模型”的概念验证。

其科学价值在于:1)提供了更接近体内环境的药物测试平台:MCCA能够模拟多器官相互作用和药物动态暴露,克服了传统静态培养的局限性。2)揭示了微环境对细胞药物响应的重要影响:研究发现细胞在动态微流控环境中的药物敏感性与静态培养有显著不同,且细胞类型间差异更大,这强调了在药物筛选模型中考虑培养系统物理环境(如流体剪切力、3D基质、多细胞旁分泌信号)的必要性。3)建立了有效的定量分析框架:PK-PD模型不仅用于描述和预测实验结果,其拟合参数的比较还为理解细胞在不同条件下的行为差异提供了定量见解。

其应用价值在于:这种“体外实验(MCCA)+ 计算机模拟(PK-PD模型)”的整合平台,为药物研发的早期阶段提供了一个具有更高预测能力的新型毒性测试与机制研究工具。它有助于更早、更准确地识别因PK特性或器官特异性毒性而可能失败的候选药物,从而节省研发资源和时间。此外,该平台可用于研究药物-药物相互作用(如本例中的5-FU与尿嘧啶)、评估个体化医疗方案等。

五、 研究亮点

  1. 方法学创新:首创了将集成PK-PD数学模型多器官微流控芯片实验数据深度结合的研究范式,为体外药理学研究提供了强大的定量分析工具。
  2. 技术改进:对MCCA装置的重新设计(分层结构、可逆密封、重力驱动)切实解决了微流控技术走向实际应用的几个关键痛点(操作复杂、气泡问题、多细胞接种困难),提升了技术的可及性。
  3. 重要发现:明确证实了细胞对药物的响应高度依赖于培养环境(静态vs.动态),且微流控环境能放大不同细胞类型间的响应差异。这一发现对如何解读和设计体外药物测试实验具有重要指导意义。
  4. 机制探索:通过结合实验与模拟,敏锐地提出并初步验证了封装基质(水凝胶)可能通过影响细胞代谢功能来改变药物效应的假设,为后续优化细胞培养微环境指明了方向。

六、 其他有价值的讨论

论文还讨论了重力诱导往复流动与连续循环流动在药代动力学模拟上的差异,并通过数学模拟证明其影响可忽略。同时,作者也指出了当前系统的局限性,如长期运行时因培养基不更换导致的营养耗竭问题,并提出了未来改进方向,例如优化设计以实现更长时间的培养和更便捷的介质管理。这些讨论体现了研究的严谨性和前瞻性。

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