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CRISPR/Cas9介导的体内筛选揭示TFDP1和E2F4转录因子在造血中的关键功能

期刊:leukemiaDOI:10.1038/s41375-024-02357-w

CRISPR/Cas9体内筛选揭示TFDP1与E2F4在造血功能中的关键作用

作者与发表信息
本研究由Ngoc Tung Tran(现任职于印第安纳大学医学院)、Robin Graf(柏林夏里特医学院)、Klaus Rajewsky和Van Trung Chu(均来自德国柏林Max-Delbrück分子医学中心)等共同完成,于2024年7月23日发表于《Leukemia》(2024年38卷,2003-2015页)。


学术背景

研究领域与动机
造血作用(Hematopoiesis)是由造血干细胞和祖细胞(HSPCs)驱动的持续血液生成过程,其增殖与分化受复杂转录网络调控。尽管已知部分转录因子(如GATA家族、锌指蛋白ZFP等)参与调控,但HSPC移植后造血重建的分子机制尚未完全阐明。本研究旨在通过CRISPR/Cas9体内筛选,鉴定调控HSPC增殖和分化的关键转录因子。

科学问题
HSPC移植后如何通过转录网络实现高效造血重建?哪些转录因子是这一过程的核心调控者?

研究目标
开发基于CRISPR/Cas9的体内遗传筛选系统,鉴定HSPC增殖和移植后造血功能必需的关键转录因子,并解析其分子机制。


研究流程与方法

1. 体外CRISPR/Cas9筛选

  • 研究对象:从小鼠骨髓中分离Lin-Sca1+cKit+ HSPCs,混合Cas9-GFP转基因与野生型细胞(1:1比例)。
  • 实验设计:针对32个候选基因(包括29个ZFP、TFDP家族成员及其他高表达转录因子)设计3个sgRNA/基因,以靶向rosa26的sgRNA为阴性对照。
  • 方法:通过慢病毒转导sgRNA,感染效率控制在20-60%。培养7天后,通过流式细胞术分析GFP+(Cas9+)细胞的存活/增殖比例(Survival/Proliferation Score)。
  • 关键发现:TFDP1和ZFP114的敲除导致HSPCs存活率显著降低(Sur/Pro Score < -1),与已知必需基因LMO2和UHRF1效果相当。

2. 体内CRISPR/Cas9筛选

  • 动物模型:将sgRNA感染的Cas9+/Cas9- HSPCs(3:2比例)移植至亚致死剂量照射的Rag2-/-γc-/-免疫缺陷小鼠,覆盖500 HSPCs/sgRNA。
  • 分析时间点:移植8周后,通过深度测序检测骨髓、脾脏中sgRNA的丰度变化。
  • 验证结果:TFDP1敲除导致所有造血谱系(HSPCs、粒细胞、B/T细胞)的sgRNA丰度显著下降,而ZFP114无此效应,表明TFDP1是移植后造血的关键调控因子。

3. TFDP1与E2F4的功能验证

  • 相互作用验证:通过免疫共沉淀(Co-IP)证实TFDP1与E2F4在HSPCs中直接结合。
  • 细胞表型
    • 增殖实验:CellTrace标记显示TFDP1或E2F4敲除的HSPCs分裂停滞(第3天停滞于1-2次分裂,对照组达5次)。
    • 凋亡检测:Annexin V和Caspase-3染色未发现凋亡增加,表明表型源于增殖抑制。
  • 转录组分析:RNA-seq显示TFDP1敲除导致细胞周期相关基因(如CDK1)下调,其中50%为TFDP1/E2F4直接靶标(通过ChIP-seq数据交叉验证)。

4. 数据整合与机制解析

  • Meta分析:整合公共数据集(如小鼠胚胎干细胞E2F4 ChIP-seq),发现TFDP1/E2F4通过保守结合位点激活细胞周期基因。
  • 特异性分析:E2F4在HSPCs中为促增殖因子,而在B细胞中作用较弱,提示细胞类型依赖性功能。

主要结果与逻辑关联

  1. 体外筛选:初步锁定TFDP1为HSPC增殖必需因子。
  2. 体内验证:移植模型证实TFDP1缺失损害多谱系造血重建。
  3. 分子机制:TFDP1与E2F4形成复合物,直接激活细胞周期基因(如CDK1),而非通过凋亡途径。
  4. 保守性:TFDP1/E2F4结合位点在人与小鼠中高度保守,提示跨物种功能相似性。

结论与意义

科学价值
- 首次通过CRISPR/Cas9体内筛选揭示TFDP1/E2F4是HSPC增殖的核心转录激活复合物。
- 提出“TFDP1-E2F4-细胞周期基因”轴是造血稳态和移植后重建的关键调控通路。

应用潜力
- 为造血干细胞移植(HSCT)效率提升提供新靶点。
- 为血液系统增殖性疾病(如白血病)的治疗策略开发提供理论基础。


研究亮点

  1. 方法创新:建立高效体内CRISPR筛选系统,结合Cas9转基因小鼠与深度测序,实现单sgRNA/细胞的精准分析。
  2. 发现新颖性:揭示E2F4在HSPCs中作为转录激活因子的非经典功能(传统认为E2F4是抑制因子)。
  3. 跨学科整合:综合遗传学、转录组学及表观遗传学数据,全面解析TFDP1/E2F4的调控网络。

补充价值
- 公开数据集(RNA-seq、ChIP-seq)为后续研究提供资源。
- 开发的CRISPRgold sgRNA设计软件可用于其他遗传筛选研究。

(注:全文基于原文内容提炼,专业术语如“HSPCs”首次出现时标注英文,后续使用中文简称“造血干细胞/祖细胞”。)

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