这篇文档属于类型a,即报告了一项原创性研究。以下是针对该研究的学术报告:
本研究由韩国庆北国立大学医学院(Kyungpook National University)的Eun Jung Oh、Hyun Mi Kim、Suin Kwak、Chanhoe Huh(延世大学)及通讯作者Ho Yun Chung团队完成,发表于期刊Cells(2024年11月25日),标题为《The Formation of Human Arteriovenous Malformation Organoids and Their Characteristics》。
科学领域:本研究属于血管生物学与组织工程交叉领域,聚焦于动静脉畸形(Arteriovenous Malformations, AVMs)的体外模型构建。AVMs是一种罕见的血管异常疾病,特征为动脉与静脉直接相连(缺乏毛细血管床),导致异常血管网络形成,可能引发组织破坏、出血甚至器官功能障碍。目前AVMs的治疗(如手术、硬化疗法)效果有限,且缺乏可靠的疾病模型研究其病理机制。
研究动机:
- 现有AVM研究依赖动物模型或二维(2D)细胞培养,无法完全模拟人体内血管微环境。
- 三维(3D)类器官技术可更真实地再现细胞间相互作用和病理特征,但此前尚无AVM特异性类器官模型。
- 本研究旨在通过诱导多能干细胞(iPSCs)构建AVM类器官(HBVOs),为疾病机制研究和药物筛选提供新工具。
步骤1:细胞分离与培养
- 成纤维细胞分离:皮肤组织经Dispase和胶原酶II消化,过滤后培养于DMEM培养基。
- 内皮细胞(ECs)分离:血管组织经Dispase II和胶原酶I处理,培养于EMB-2培养基。
步骤2:iPSCs重编程
- 使用非修饰RNA(nm-RNA)将成纤维细胞重编程为iPSCs,通过Oct4免疫荧光染色验证多能性。
步骤3:血管类器官(BVOs)构建
- 类器官分化:iPSCs经三步诱导:
1. 聚集形成(24小时,StemDiff™聚集培养基);
2. 中胚层诱导(3天,StemDiff™中胚层诱导培养基);
3. 血管诱导(胶原/Matrigel®基质中培养5天,StemDiff™成熟培养基)。
- 类器官分析:通过全组织免疫染色(whole-mount staining)检测CD31(内皮标记)和Phalloidin(平滑肌标记),并量化血管网络复杂度。
步骤4:基因与miRNA表达分析
- qRT-PCR:检测血管生成相关基因(FSTL1、CSPG4、MARCKS)在2D/3D模型中的表达差异。
- TaqMan miRNA检测:分析AVM标志性miRNA(hsa-mir-135b-5p)的表达水平。
此报告系统梳理了研究的背景、方法、结果与价值,为相关领域研究者提供了详实的参考。