清华大学医学院干细胞与再生医学中心的Fengzhi Zhang、Yonglin Zhu、Jie Na等学者于2021年2月在《Biomaterials》期刊(Volume 271, 120713)发表了一项关于人多能干细胞(human pluripotent stem cells, hPSCs)高效分化为血管内皮细胞(endothelial cells, ECs)和平滑肌细胞(smooth muscle cells, SMCs)的创新研究。这项研究开发了一种不含胰岛素(insulin-free)的简化化学成分确定培养基系统(AATS培养基),显著提高了血管细胞分化的效率和可扩展性,为再生医学中的血管修复治疗提供了新的解决方案。
在再生医学领域,利用hPSCs分化的血管细胞治疗缺血性疾病(如心肌梗死、中风等)具有重要前景。然而,现有分化方法存在三个关键瓶颈:一是培养基成分复杂(如B27含27种成分),存在批次差异;二是动物源成分可能引入异种抗原;三是高成本阻碍规模化生产。更关键的是,既往研究未充分关注胰岛素对血管分化的调控作用——虽然胰岛素抑制心肌分化已被证实,但其对血管谱系的影响尚不明确。基于PI3K/AKT/mTOR通路在维持干细胞多能性中的作用,研究团队假设去除胰岛素可通过代谢重编程和激活自噬(autophagy)促进血管中胚层分化。
研究首先利用MESP1-mTomato报告基因hESC系(H9-mT)验证胰岛素的作用。在基础培养基(RPMI 1640)中添加四种成分:重组人白蛋白(recombinant human albumin)、L-抗坏血酸-2-磷酸镁(L-ascorbic acid 2-phosphate)、人脱铁转铁蛋白(human apo-transferrin)和亚硒酸钠(sodium selenite),构成AATS培养基。通过流式细胞术发现,不含胰岛素条件下,即使低浓度BMP4(5 ng/mL)也能诱导90%以上MESP1+中胚层细胞,而含胰岛素组(AATSi)效率显著降低(图1c)。转录组分析显示,AATS组中胚层转录因子(FOXC1、ISL1等)表达上调,而多能性基因(OCT4、LIN28A等)下调。ATAC-seq进一步揭示,AATS组开放染色质区域富含心血管中胚层转录因子结合基序(如GATA4/6、TEAD1)。
通过LC-MS/MS代谢组学发现,AATS组细胞内糖酵解中间体(如磷酸烯醇式丙酮酸PEP)和三羧酸循环产物(如α-酮戊二酸α-KG)显著积累,而AATSi组更依赖糖酵解(图2b)。关键的是,AATS组环磷酸腺苷(cAMP)水平升高,使用cAMP激动剂Forskolin可逆转胰岛素对中胚层分化的抑制(图2d-e)。透射电镜观察到AATS组早期出现自噬溶酶体(autolysosomes),Western blot显示LC3-II蛋白水平在分化9小时内即显著增加(图2f-i),表明胰岛素去除通过抑制mTOR激活自噬通路。
在AATS培养基中,研究团队建立了两步分化方案(图3a):
- 阶段I(0-3天):用BMP4和CHIR99021诱导中胚层,hPSCs分化为FLK1+祖细胞效率达38%(vs. AATSi组27.7%)。
- 阶段II(3-8天):EC分化添加VEGF和bFGF,获得CD31+CD144+双阳性细胞(53.7%);SMC分化使用PDGF-BB和TGFβ1,SM22α+细胞比例超过90%(图4e)。值得注意的是,仅在阶段I去除胰岛素即可实现高效分化,说明胰岛素主要影响早期命运决定。
分化的ECs表现出典型功能:摄取乙酰化低密度脂蛋白(ac-LDL)和体外成管(图3h-i);SMCs对卡巴胆碱(carbachol)刺激表现收缩反应(图4g-h)。通过3D微支架(microscaffold, MS)培养,从100万hPSCs可扩增出4亿CD31+细胞(400倍)(图6h)。动物实验中,将ECs与SMCs混合移植到小鼠下肢缺血(CLI)模型,14天后形成人源CD31+血管(图7d-e),显著改善血流灌注;在脑卒中(MCAO)模型中,移植ECs促进神经元存活(图7i),运动功能恢复。
该研究的局限性在于未阐明cAMP下游的具体效应分子,且3D培养的长期稳定性需进一步验证。未来可探索AATS培养基在其他谱系分化(如造血干细胞)中的应用,并开发冻存方案以促进临床转化。