第一作者与机构
本研究由新西兰坎特伯雷大学(University of Canterbury)电气与计算机工程系的Fahmi Samsuri、Maan M. Alkaisi团队联合新西兰植物与食品研究所(The New Zealand Institute for Plant & Food Research Ltd)的John S. Mitchell以及奥塔哥大学(University of Otago)健康科学研究中心的John J. Evans共同完成,成果发表于2009年《Journal of Nanotechnology》第6卷,文章编号593410,DOI:10.1155/2009/593410。
科学领域与挑战
本研究属于纳米生物技术与细胞成像交叉领域,致力于解决传统显微技术(如原子力显微镜AFM)在活细胞成像中的核心矛盾:高分辨率成像需要高探针力,但活细胞软组织易受损伤。尽管AFM理论上可实现50-500纳米分辨率,但现有技术需在液体环境中扫描,易受阻尼效应干扰;而透射电镜(TEM)则需复杂的脱水固定步骤,导致细胞变形伪影。
技术突破需求
此前生物压印(bioimprint)技术使用热固化聚二甲基硅氧烷(PDMS),但高温(>60°C)会导致细胞脱水。2006年团队开发的紫外固化硅氧烷共聚物虽有所改进,仍存在固化时间长(数分钟)、渗透伪影等问题。因此,亟需开发一种快速固化、生物兼容、高分辨率的新型聚合物体系。
研究目标
开发基于甲基丙烯酸/乙二醇二甲基丙烯酸酯共聚物(MAA/EGDMA)的紫外固化旋涂工艺,实现:
1. 秒级固化捕捉活细胞动态结构
2. 纳米级复刻肌肉细胞膜表面特征(如纤维、融合孔)
3. 为疾病早期诊断(如癌症膜形态变化)提供新型检测平台
预处理:
聚合物配方:
旋涂-紫外同步固化:
剥离与清洗:
膜表面拓扑结构:
肌膜(sarcolemma)亚结构:
三维形貌保留:
| 参数 | 本技术(MAA/EGDMA) | 传统PDMS压印 |
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| 固化时间 | 15-180秒 | 数小时 |
| 理论分辨率 | <50 nm | ~100 nm | | 细胞暴露温度 | 室温 | >60°C |
科学意义
1. 方法学突破:首次将紫外固化MAA/EGDMA共聚物应用于肌肉细胞纳米压印,解决热固化导致的细胞脱水难题
2. 动态捕捉潜力:秒级固化有望记录毫秒级细胞活动(如胞吐),为活细胞动态研究提供新工具
应用前景
1. 疾病早期诊断:通过膜异常结构(如癌症相关融合孔)识别实现无创检测
2. 组织工程支架:高精度3D生物支架可指导肌肉组织再生
双重创新材料:
工艺突破:
跨尺度成像能力:
局限性与展望
当前技术需完全吸除细胞表面液体,可能引发渗透压应激。未来将优化温和干燥工艺,并扩展至神经元等敏感细胞研究。