主要作者及机构
本研究由麻省理工学院(MIT)的Juan S. Gnecco、Alexander Brown、Linda G. Griffith团队主导,合作单位包括达特茅斯学院Thayer工程学院和Newton Wellesley医院。研究成果于2023年8月11日发表于期刊*Med*(Volume 4, Pages 554–579),标题为《Organoid co-culture model of the human endometrium in a fully synthetic extracellular matrix enables the study of epithelial-stromal crosstalk》。
研究领域与动机
子宫内膜是高度动态的组织,其周期性再生受性激素(雌激素E2和孕激素P4)调控,涉及上皮细胞与基质细胞的复杂互作。现有模型(如Matrigel)因成分不明确、批次差异大且难以支持长期共培养,限制了生殖生理和疾病机制的研究。本研究旨在开发一种完全合成的细胞外基质(extracellular matrix, ECM)替代Matrigel,以模拟子宫内膜微环境,解析激素介导的细胞间通讯。
科学问题
1. 如何设计合成ECM以同时支持子宫内膜上皮类器官(endometrial epithelial organoids, EEOs)和基质细胞(endometrial stromal cells, ESCs)的长期共培养?
2. 该模型能否复现月经周期中激素驱动的关键表型变化?
3. 炎症因子IL-1β如何通过上皮-间质互作影响疾病表型(如子宫内膜异位症)?
方法开发
- 基质成分:基于多组学分析(蛋白质组和单细胞RNA测序),筛选子宫内膜周期依赖性整合素(integrin)表达谱(如α1β1、α2β1、α5β1),确定关键肽段配体:
- 胶原衍生肽GFOGER(靶向α1β1/α2β1)
- 纤连蛋白衍生肽PHSRN-K-RGD(靶向αvβ1/α5β1)
- 材料合成:采用8臂聚乙二醇(PEG)水凝胶,通过基质金属蛋白酶(MMP)可降解交联肽(CL-LW)构建可动态重塑的3D培养体系。
实验验证
- 刚度筛选:测试3 wt%(~300 Pa,接近生理刚度)、5 wt%(~2 kPa)、7 wt%(~6 kPa,模拟纤维化)PEG水凝胶对EEOs形成效率的影响(n=8例供体)。
- 配体组合:比较单一GFOGER、PHSRN-K-RGD及混合配体(Mix)对类器官形态的影响,发现Mix配方在3 wt%凝胶中效果最佳(类器官直径分布与Matrigel无显著差异)。
上皮类器官(EEOs)
- 表型分析:在3 wt% Mix凝胶中,EEOs形成极性结构(顶端F-actin、基底膜层粘连蛋白沉积),并保留激素响应性(孕激素受体PGR下调验证)。
- 功能验证:类器官分泌周期特异性标志物(如PAEP),且纤毛/分泌细胞分化可通过活体成像追踪。
基质细胞(ESCs)
- 形态与功能:软凝胶(3 wt%)更利于ESCs延展;IL-1β刺激抑制蜕膜化(prolactin分泌减少50%),但增加MMP活性(视频分析显示细胞迁移加速)。
实验设计
- 激素模拟:15天培养中分三组:增殖期(E2)、分泌期(E2+MPA)、撤退期(MPA停药+RU-486)。
- 炎症干预:IL-1β(1 ng/mL)持续刺激,分析上皮增殖与基质凋亡。
关键发现
- 激素响应:共培养组中,孕激素诱导的PAEP分泌和基质蜕膜化(PRL↑)与体内分泌期一致;撤退期上皮凋亡增加2倍(caspase-3+染色)。
- 炎症效应:IL-1β通过基质介导导致上皮异常增殖(Edu+细胞增加3倍),但抑制PGR表达,模拟子宫内膜异位症的“孕激素抵抗”表型。
科学意义
- 首次实现完全合成ECM支持子宫内膜上皮-基质共培养,解决了Matrigel的批次变异和功能局限问题。
- 揭示IL-1β通过基质介导的上皮表型转化,为子宫内膜异位症的“炎症-增殖”假说提供实验依据。
应用前景
- 可作为药物筛选平台(如测试抗炎药对孕激素抵抗的逆转效果)。
- 扩展至其他激素敏感组织(如乳腺、前列腺)的体外建模。
局限性
- 样本量较小(n=8供体),需扩大验证人群多样性。
- 未纳入免疫细胞等微环境组分,未来可结合微流控技术构建更复杂模型。
本研究通过工程学与生物学的交叉,为女性生殖健康研究提供了可重复、高仿生的实验工具,并为子宫内膜相关疾病的机制解析开辟了新途径。