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TIGR-TAS:原核生物及其病毒中的模块化RNA引导DNA靶向系统家族

期刊:science

类型a:原创性研究学术报告

1. 研究团队与发表信息
本研究由Guilhem Faure、Makoto Saito、Max E. Wilkinson等共同第一作者(†标注)及通讯作者Feng Zhang(*标注)团队完成,团队成员来自Broad Institute of MIT and Harvard、McGovern Institute for Brain Research at MIT、Howard Hughes Medical Institute等机构。研究论文《TIGR-TAS: A family of modular RNA-guided DNA-targeting systems in prokaryotes and their viruses》于2025年5月发表于期刊《Science》(卷388,期6746,编号eadv9789),采用知识共享许可(CC BY 4.0)。

2. 学术背景与研究目标
科学领域:本研究属于RNA引导的基因编辑系统领域,聚焦原核生物(如细菌、古菌)及其病毒中新型RNA引导的DNA靶向系统。
研究动机:尽管CRISPR-Cas系统已被广泛开发为基因编辑工具,但其依赖PAM序列等限制促使科学家探索更灵活的RNA引导系统。此外,真核生物中box C/D snoRNP(小核仁核糖核蛋白)和IS110转座酶的RNA引导机制暗示了未被发掘的多样性。
研究目标:通过结构同源性和序列挖掘,鉴定一类新型模块化RNA引导系统(TIGR-TAS),解析其工作机制,并验证其在人类细胞基因编辑中的应用潜力。

3. 研究流程与方法
(1)系统发现与结构挖掘
- 方法:以Cas9的RNA结合域(RBD)为起点,通过DALI和FoldSeek软件进行结构相似性搜索,发现IS110转座酶的RNA结合域与Cas9 RBD相似(Z-score=5.9)。进一步分析揭示其与box C/D snoRNP的NOP结构域同源。
- 创新工具:结合社区检测算法(Leiden算法)和蛋白质嵌入(ESM2模型)对NOP结构域家族聚类,鉴定出19个亚群,其中一类为TIGR-TAS系统。

(2)TIGR阵列与TAS蛋白的特征解析
- 研究对象:从噬菌体和寄生细菌基因组中鉴定出TIGR(Tandem Interspaced Guide RNA)阵列及关联的TAS(TIGR-associated)蛋白家族(包括TASA、TASH、TASR三类)。
- 实验验证:在大肠杆菌中异源表达TAS蛋白(如TATASR、SPTASH)及其TIGR阵列,通过小RNA测序发现阵列被加工为36 nt的tigrRNA,且加工依赖TAS蛋白但无需其核酸酶活性。

(3)靶向机制与切割特性
- 靶向规则:tigrRNA通过两个间隔区(spacer A/B)分别配对靶DNA的两条链,形成“双间隔区靶向”机制(图4a)。体外实验显示,TASR(含RuvC核酸酶)在靶DNA上产生8 nt 3′突出端的双链断裂,切割位点位于spacer第5碱基互补位点下游(“C−5规则”)。
- 无PAM依赖:通过随机化靶点侧翼序列的TAM筛选实验,证实TIGR系统无需PAM/TAM序列即可靶向DNA。

(4)结构解析与进化关联
- 冷冻电镜(cryo-EM):解析TASR-tigrRNA-DNA复合物(3.1 Å分辨率,EMDB-48616,PDB 9MTY),显示TASR形成二聚体,tigrRNA呈“8字形”构象,与box C/D snoRNP和IS110转座酶结构相似(图6)。
- 进化意义:TAS蛋白的NOP结构域与真核生物snoRNP同源,提示RNA引导系统的共同起源。

(5)人类细胞基因编辑验证
- 实验设计:将人源密码子优化的TASR(如PARtasR)与合成tigrRNA共转染HEK293FT细胞,靶向B2M、CXCR4等基因位点。
- 结果:PARtasR在CXCR4位点产生3.6%的插入缺失(indel),编辑模式与Cas9相似(图5b-e)。

4. 主要结果与逻辑链条
- 结果1:发现TIGR-TAS系统通过tigrRNA的双间隔区靶向机制实现DNA识别,无PAM限制。
- 结果2:TASR的RuvC结构域切割DNA依赖tigrRNA引导,切割位点由“C−5规则”决定。
- 结果3:结构分析揭示TASR与snoRNP的进化关联,为RNA引导系统的多样性提供证据。
- 结果4:人类细胞中TASR可实现基因编辑,拓展了CRISPR以外的工具选择。

5. 研究结论与价值
- 科学价值:揭示了原核生物中新型RNA引导系统的多样性,填补了CRISPR与真核snoRNP间的进化空白。
- 应用价值:TIGR-TAS系统无需PAM的特性可扩展基因编辑靶点范围,为开发新型碱基编辑器或Prime编辑器提供基础。

6. 研究亮点
- 创新性发现:首次报道双间隔区RNA引导机制及无PAM依赖的DNA靶向。
- 方法学创新:结合结构挖掘、社区检测算法和冷冻电镜解析复合物结构。
- 跨域关联:建立原核TIGR系统与真核snoRNP、IS110转座酶的进化联系。

7. 其他价值
研究数据(序列、质粒、分析脚本)通过GitHub和Zenodo公开,促进工具开发。专利布局(Broad Institute和MIT联合申请)及作者Feng Zhang的商业化关联(如Editas Medicine)暗示其转化潜力。

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