这项研究由来自哥伦比亚大学医学中心的Longfei Gao、Heather Lee、Joshua H. Goodman和Lei Ding团队完成,成果发表于2024年5月23日的《Cell》期刊(Volume 187, Issue 11)。研究聚焦于造血干细胞(Hematopoietic Stem Cells, HSCs)微环境(niche)的形成与维持机制,揭示了表观转录组程序(epitranscriptomic program)在其中的关键作用。
造血干细胞的生存和功能依赖于其周围的微环境,而骨髓间充质基质细胞(Mesenchymal Stromal Cells, MSCs)是这一微环境的核心组成部分。尽管已有研究揭示了维持成年骨髓HSC微环境的分子机制,但关于该微环境如何形成的科学问题仍不清楚。本研究团队发现,围产期(perinatal stage)骨髓MSCs高表达与m6A(N6-甲基腺苷)修饰相关的基因,而成年后表达水平显著下降。这一现象提示,m6A介导的表观转录调控可能在HSC微环境形成中发挥独特作用。研究旨在探索MSCs中m6A修饰对HSC微环境生成的调控机制,并比较其与微环境维持机制的差异。
研究首先通过单细胞RNA测序(scRNA-seq)分析了围产期和成年小鼠骨髓基质细胞的转录组差异。数据来源于公共数据库(GSE152020),重点聚焦MSCs(标记基因为Pdgra+和Prx1+)。分析发现,围产期MSCs显著富集m6A相关通路(如RNA甲基化复合物基因),而成年MSCs高表达已知的微环境维持因子(如Foxc1、Ebf3等)。RT-qPCR和流式细胞术进一步验证了甲基转移酶Mettl3在围产期MSCs中的高表达及其出生后的下调趋势。
为验证Mettl3的功能,研究团队构建了三种条件性敲除小鼠: - Prx1-Cre; Mettl3fl/fl:靶向发育中的MSCs(从胚胎期E9.5开始); - Ocn-Cre; Mettl3fl/fl:靶向成骨细胞(osteoblasts); - Lepr-Cre; Mettl3fl/fl:靶向成年骨髓MSCs。
通过流式分选和ELISA证实,Prx1-Cre模型成功敲除了MSCs中的Mettl3,并导致m6A修饰水平显著降低。
通过m6A甲基化RNA免疫共沉淀测序(MeRIP-seq)和scRNA-seq联合分析,鉴定出转录因子Klf2是Mettl3的关键靶标:
- Mettl3通过m6A修饰促进Klf2 mRNA降解,从而抑制其表达;
- Klf2过表达会激活成骨分化基因(如Runx2),同时抑制HSC支持因子(如Cxcl12)和脂肪生成基因(如Pparg);
- 双敲除模型(Prx1-Cre; Mettl3fl/fl; Klf2fl/fl)部分挽救了HSC微环境缺陷,证实Klf2是Mettl3的下游效应分子。
该研究首次阐明:
1. 机制分离:HSC微环境的形成和维持由不同的分子机制调控(Mettl3-m6A-Klf2轴特异性作用于形成阶段);
2. 治疗潜力:靶向表观转录程序可能为再生医学中人工微环境构建提供新策略;
3. 概念创新:挑战了“微环境是静态结构”的传统观点,强调其动态发育的调控特异性。
研究还揭示了内皮细胞亚群在Mettl3缺失时的命运转变(动脉型增多),提示MSCs可能通过旁分泌调控血管生态位(vascular niche),这为后续研究提供了新方向。