作者及机构
本研究的通讯作者为英国剑桥大学化学系的David Klenerman教授和伦敦帝国理工学院医学系的Yuri E. Korchev教授。合作团队包括美国肯塔基大学生理系的Gregory I. Frolenkov、西班牙研究者Daniel Sánchez、英国Babraham研究所的Peter S. James与Roy Jones,以及英国Ionscope有限公司的Noah Freedman等。研究发表于《Angewandte Chemie International Edition》2006年第45卷,资助方为英国生物技术与生物科学研究理事会(BBSRC)。
研究领域与动机
细胞质膜的组织结构与功能微域(microdomain)是膜生物学研究的核心问题。传统电子显微镜技术(如冷冻断裂、免疫金标记)虽能提供高分辨率图像,但仅适用于固定或冷冻样本,无法实现活细胞动态观测。而荧光标记或单颗粒追踪等光学方法虽可追踪特定分子运动,但需标记且无法显示目标分子与周围膜结构的相对位置关系。
扫描探针显微镜(SPM)无需复杂样本制备,但原子力显微镜(AFM)在活细胞表面难以达到分子分辨率。本研究聚焦于扫描离子电导显微镜(SICM)的改进,旨在突破活细胞膜蛋白成像的分辨率限制,直接观测蛋白质复合体的动态重组。
研究目标
1. 开发内径约13 nm的超细石英纳米移液管,提升SICM分辨率至3–6 nm。
2. 验证SICM对单蛋白分子的成像能力(以Bacillus sphaericus的S-layer蛋白为模型)。
3. 应用SICM观测活细胞(猪精子)膜蛋白的分布与动态变化。
实验对象:
- S-layer蛋白晶体:取自Bacillus sphaericus CCM 2177,形成13.1 nm间距的方形晶格。
- 纳米移液管:通过拉制石英毛细管获得,内径约12.5 nm,外径30 nm(含2.5 nm铂涂层)。
关键改进:
- 硬件:采用压电陶瓷控制系统精确调控移液管垂直位移,通过离子电流反馈维持探针-样本距离为移液管内径半径。
- 软件:开发定制化扫描控制算法,增强机械稳定性。
实验步骤:
1. 成像S-layer蛋白:未处理的原始图像清晰显示单个蛋白分子(图1b),缺失的蛋白亚基亦可识别。
2. 分辨率分析:通过二维快速傅里叶变换(2D FFT)确认横向分辨率为3–6 nm(图1d–e)。
3. 尺寸统计:蛋白宽度分布峰值为13.19±0.04 nm,高度变化为1.058±0.013 nm(图1c),与已知晶格参数一致。
实验对象:
- 猪精子:选择其顶体反应后的 equatorial segment(赤道段)区域,因该区域膜蛋白重组显著。
实验设计:
1. 低分辨率扫描:确认精子头部及中段的整体形貌(图2a)。
2. 高分辨率聚焦:针对赤道段亚区(subsegment)成像,发现直径约14 nm与30 nm的两类膜蛋白颗粒(图2d)。
3. 动态观测:间隔10分钟重复扫描,分析蛋白稳定性与运动(图3)。
数据分析:
- 颗粒分布:小颗粒密度为380个/μm²,大颗粒为220个/μm²(图2e–f)。
- 动态行为:多数蛋白位置稳定(可能与细胞骨架锚定相关),少数发生聚集或解离(图3a–f)。
(全文约1800字)