CRISPR Anti-Tag介导的室温RNA检测技术(CARDD)研究进展
作者及发表信息
本研究由Jeong Moon(美国康涅狄格大学健康中心生物医学工程系)、Jiongyu Zhang、Xin Guan等共同完成,合作单位包括韩国顺天乡大学生物制药科学系、赞比亚传染病研究中心等。研究成果于2025年发表于*Nature Communications*(DOI: 10.1038/s41467-025-64205-4)。
学术背景
CRISPR/Cas系统(成簇规律间隔短回文重复序列/CRISPR相关系统)因其高特异性和可编程性成为核酸检测的重要工具。其中,Cas13a(一种RNA引导的核糖核酸酶)因其RNA靶向能力备受关注。然而,传统Cas13a检测技术面临两大挑战:依赖核酸预扩增(如RT-RPA、RT-LAMP)和需高温反应条件(37°C),限制了其在资源有限环境中的应用。
本研究旨在解决上述问题,通过解析Cas13a的变构调控机制,发现靶标RNA的二级结构和反标签序列(anti-tag)可抑制Cas13a的反式切割活性。基于此,团队设计了一种新型“CRISPR反标签发夹结构”(CRISPR anti-tag hairpin),开发出CRISPR Anti-Tag介导的室温RNA检测技术(CARDD),实现无需预扩增、室温条件下的一步式高灵敏度RNA检测。
研究流程与方法
1. Cas13a活性调控机制解析
- 研究对象:靶标RNA(单链/双链结构)、含anti-tag序列的RNA、设计的发夹结构(14d/16d/18d/20d hp)。
- 实验设计:
- 比较不同温度(25°C–37°C)下Cas13a的反式切割效率,发现25°C时活性最高(图2b-c)。
- 验证anti-tag序列(5’-RGRURURURURARGRU-3’)对Cas13a活性的抑制效应(图2d),发现双链RNA(dsRNA)或发夹结构进一步降低活性。
- 设计含不对称DNA/RNA嵌合茎区的发夹结构(图1b),通过PAGE凝胶电泳验证其切割效率(图3d)。
CARDD技术开发
灵敏度与特异性验证
临床样本验证
主要结果与逻辑关联
- 温度优化:25°C下Cas13a活性最高,简化设备需求(图2c)。
- anti-tag抑制效应:为设计信号放大发夹提供理论基础(图2d)。
- 级联放大机制:发夹切割后释放的RNA二次激活Cas13a,实现信号指数增长(图3c-d)。
- 临床适用性:低浓度病毒RNA检测与临床样本验证凸显技术实用性(图6)。
结论与价值
1. 科学价值:
- 首次揭示anti-tag序列与RNA二级结构对Cas13a活性的协同抑制机制。
- 提出“变构调控-级联放大”新模型,为CRISPR诊断工具设计提供新范式。
研究亮点
1. 创新方法:首创CRISPR反标签发夹结构,实现单酶级联信号放大。
2. 灵敏度突破:10 aM检测限为目前Cas13a直接检测的最高水平。
3. 临床兼容性:在资源有限环境中展示HIV/HCV检测潜力。
局限与展望
- 发夹设计需进一步优化以降低背景噪声。
- 未来可结合纸基检测或便携荧光读值设备,提升现场适用性。
本研究为CRISPR分子诊断开辟了新路径,尤其对传染病即时检测(POCT)具有重要推动作用。