分享自:

Vivovec平台用于体内CAR T细胞工程的临床前概念验证

期刊:Journal for Immunotherapy of CancerDOI:10.1136/jitc-2022-006292

这篇文档属于类型a,即报告了一项原创性研究。以下是针对该研究的学术报告:


VivoVec平台:基于慢病毒的体内CAR-T细胞工程临床前概念验证研究

一、研究团队与发表信息
本研究由Kathryn R Michels等17位作者共同完成,主要来自Umoja Biopharma公司(美国西雅图)及合作机构,成果发表于*Journal for Immunotherapy of Cancer*(2023年11卷,DOI:10.1136/jitc-2022-006292),标题为《Preclinical proof of concept for VivoVec, a lentiviral-based platform for in vivo CAR T-cell engineering》。

二、学术背景
CAR-T(嵌合抗原受体T细胞)疗法在B细胞恶性肿瘤治疗中展现出革命性效果,但其广泛应用受限于体外细胞制造的复杂流程和淋巴清除化疗的毒性。本研究旨在开发VivoVec平台——一种基于慢病毒载体(lentiviral vector, LVV)的体内CAR-T工程技术,通过单次注射实现T细胞的原位基因修饰,同时整合雷帕霉素激活的细胞因子受体(RACR, rapamycin-activated cytokine receptor)系统以替代淋巴清除需求。核心科学问题包括:① 慢病毒载体表面工程(anti-CD3 scfv)能否靶向激活并转导静息T细胞;② RACR系统能否选择性扩增CAR-T细胞;③ 体内给药的安全性与分布特征。

三、研究流程与方法
1. 载体设计与生产
- 开发第三代自失活慢病毒载体UB-VV100,表面展示anti-CD3单链抗体(scfv),伪型化Cocal糖蛋白(抗血清灭活),携带抗CD19 CAR与RACR系统的多顺反子序列(通过P2A肽段连接)。
- 采用悬浮培养HEK293T细胞进行载体生产,通过PEI转染、超滤纯化,并通过ddPCR和流式细胞术定量滴度(SupT1细胞评估CAR表达)。

  1. 体外功能验证

    • T细胞转导:健康供者外周血单个核细胞(PBMCs)与UB-VV100共培养(MOI=5),评估CD25激活标志物(第3天)和CAR表达(第7天)。结果显示anti-CD3 scfv依赖的剂量依赖性转导(CD4+/CD8+ T细胞转导率5-20%)。
    • 肿瘤杀伤:转导后的CAR-T细胞与CD19+ NALM-6白血病细胞共培养,通过流式检测靶细胞凋亡(24小时)及IFN-γ/TNF-α分泌(MSD multiplex)。结果显示抗原特异性杀伤(CD19KO对照组无响应)。
    • RACR系统验证:添加雷帕霉素(1-40 nM)后,CAR-T细胞扩增10-50倍(流式计数),且记忆表型(CD45RA+CCR7+)比例高于未转导细胞。
  2. 患者样本验证

    • B-ALL(n=3)和DLBCL(n=5)患者PBMCs转导后,10 nM雷帕霉素处理使CAR-T频率提升3-5倍(第20天),并保留肿瘤杀伤功能(CD19+ NALM-6裂解率>80%)。
  3. 体内实验

    • 免疫人源化小鼠模型
      • CD34+人源化NSG小鼠:腹腔注射UB-VV100(0.4-10×10^6 TU)后,剂量依赖性B细胞清除(流式检测CD19+细胞减少>90%,qPCR证实脾脏/肝脏转导最高)。
      • PBMC-人源化NSG小鼠:NALM-6肿瘤模型(尾静脉注射)中,270×10^6 TU剂量组实现完全肿瘤清除(IVIS生物发光成像),且无跨物种转导(murine CD45-阴性)。
    • 犬类生物分布:超声引导淋巴结注射CD3-Cocal-GFP(4×10^8 TU),90%转导事件限于淋巴组织(ISH显示CD3+ T细胞和CD68+巨噬细胞)。
  4. 安全性评估

    • 组织病理学(H&E染色)显示无载体相关毒性;ISH证实转导细胞主要为免疫细胞(人源化小鼠中T细胞占70%以上)。

四、主要结果
1. 靶向转导:UB-VV100通过anti-CD3 scfv实现静息T细胞的高效转导(健康供者CAR+ T细胞频率达15±3%,患者样本达8±2%)。
2. RACR调控:10 nM雷帕霉素使CAR-T扩增20倍,且维持中央记忆表型(CD45RA+CCR7+占比40% vs 对照15%)。
3. 体内疗效:10×10^6 TU剂量在CD34+人源化小鼠中诱导B细胞再生障碍(p<0.01),270×10^6 TU在肿瘤模型中实现100%生存(p<0.0001)。
4. 安全分布:qPCR显示脾脏/肝脏载体基因组拷贝数最高(10^3-10^4/μg DNA),但无非免疫组织转导。

五、结论与价值
本研究首次证明:
1. 技术突破:VivoVec平台通过单次注射实现体内CAR-T生成,避免了体外制造和淋巴清除。
2. 临床意义:RACR系统通过雷帕霉素选择性扩增CAR-T,为实体瘤治疗提供新策略。
3. 转化潜力:规模化悬浮生产(>10^9 TU/mL)和良好安全性支持临床推进。

六、研究亮点
1. 创新载体设计:Cocal伪型化增强血清稳定性,anti-CD3 scfv突破静息T细胞转导限制。
2. 双功能载荷:CAR与RACR协同实现“杀伤-扩增”耦合。
3. 跨物种验证:从小鼠到犬类的生物分布数据强化临床可转化性。

七、其他发现
- 抗原逃逸预防:短铰链设计的抗CD19 CAR(FMC63 scfv)可避免肿瘤细胞表面CD19表位掩蔽(NALM-6转导后仍被CAR-T裂解)。
- 巨噬细胞作用:意外发现载体转导的巨噬细胞(CD68+)可能参与肿瘤清除,需进一步机制研究。


该研究为CAR-T疗法的“去中心化”生产提供了概念验证,有望降低治疗成本并扩展适应症范围。

上述解读依据用户上传的学术文献,如有不准确或可能侵权之处请联系本站站长:admin@fmread.com