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糖原合成酶激酶3β抑制与PARP抑制剂通过诱导同源重组缺陷在结直肠癌中的协同作用

期刊:Cell Death and DiseaseDOI:10.1038/s41419-021-03475-4

学术研究报告

本研究报告旨在介绍由中国学者主导的一项关于结直肠癌治疗新策略的原创性研究。该研究于2021年发表于国际学术期刊《Cell Death and Disease》(卷12,第183期),标题为“Glycogen Synthase Kinase 3β inhibition synergizes with PARP inhibitors through the induction of homologous recombination deficiency in colorectal cancer”(糖原合成酶激酶3β抑制通过诱导同源重组缺陷与PARP抑制剂产生协同作用治疗结直肠癌)。本报告将对该研究的作者、背景、方法、结果、结论及亮点进行系统性阐述。

第一, 研究作者与发表信息 本研究的主要完成者包括通讯作者Ze-Hong Miao(苗泽宏)和Jin-Xue He(贺金雪),以及第一作者Ning Zhang(张宁)等人。他们主要来自中国科学院上海药物研究所(国家药物筛选中心)和中国科学院大学。其他合作者来自中国科学院上海药物研究所的多个部门。这项原创性研究于2021年正式发表在由“细胞死亡与分化协会”出版的官方期刊《Cell Death and Disease》上,并以开放获取形式发表,便于全球科研人员查阅。

第二, 学术研究背景与目的 本研究属于肿瘤药理学和治疗学领域,核心聚焦于克服癌症对靶向药物的耐药性,特别是针对PARP抑制剂(PARP inhibitor, PARPi)的耐药问题。

背景知识:PARP是一种关键的DNA损伤修复酶。PARP抑制剂(如奥拉帕利、尼拉帕利等)已被批准用于治疗携带BRCA1/2基因突变的卵巢癌、乳腺癌等,其原理是利用“合成致死”效应,即在同源重组修复(Homologous Recombination Repair, HRR)功能缺陷(如BRCA突变)的癌细胞中,抑制PARP会导致DNA损伤无法修复,从而选择性杀死癌细胞。然而,临床实践面临两大挑战:首先,即使在HRR缺陷的肿瘤患者中,PARPi单药的客观缓解率也有限(≤60%),表明存在较高的原发性耐药;其次,HRR功能正常的肿瘤对PARPi不敏感。因此,开发能够选择性破坏癌细胞HRR功能、从而克服或拓宽PARPi耐药/适用范围的组合策略具有重要的临床意义。

研究目的:为了克服PARPi耐药并拓宽其临床应用,本研究旨在通过高通量筛选,寻找能够与PARPi产生强效协同作用的药物,并深入阐明其协同作用的分子机制,最终在临床前模型中验证新组合疗法的有效性和安全性。

第三, 详细研究流程与方法 本研究采用了一套从高通量筛选到体内验证的完整、多层次研究策略,流程严谨,逻辑递进。

流程一:药物组合高通量筛选与初步验证 1. 研究目标与对象:在具有原发性PARPi耐药特征的两种癌细胞模型中进行筛选:BRCA1缺陷的人乳腺癌细胞HCC1937和BRCA2缺陷的人结直肠癌细胞HCT-15。 2. 实验方法: * 筛选库:选取了99种靶向50类蛋白的已上市或临床在研抗癌药物(包括激酶抑制剂等)。 * 筛选策略:将细胞与固定浓度(引起约20%生长抑制率)的两种PARPi(奥拉帕利或尼拉帕利)以及不同浓度梯度的待测药物共培养。 * 检测指标:使用磺酰罗丹明B(SRB)法检测细胞增殖抑制率,并计算药物联用相对于单药的额外抑制效应(δIR),以热图形式呈现协同效应。 * 初步验证:对筛选出的有潜力的组合(如奥拉帕利+CDK1抑制剂或ATR抑制剂),使用CompuSyn软件和Chou-Talalay方程计算联合指数(Combination Index, CI)进行定量验证(CI表示协同作用)。 3. 关键发现:筛选结果显示,糖原合成酶激酶抑制剂(GSK3i),特别是CHIR99021 HCl和LY2090314,在HCT-15细胞中与PARPi表现出最强的协同效应。

流程二:GSK3i与多种PARPi协同作用的广谱性验证 1. 研究目标:验证筛选结果,并探索协同作用在不同PARPi和不同结直肠癌细胞系中的普适性。 2. 研究对象:除了HCT-15,还纳入了多种BRCA基因状态不同的结直肠癌细胞系(RKO, HCT-116, SW480, SW620, HT-29)以及卵巢癌细胞系UWB1.289(BRCA1缺陷)及其BRCA1修复型。 3. 实验方法: * 细胞活力检测:使用SRB法绘制剂量-效应曲线,计算IC50,并评估联合用药的CI值。 * 机制初探:通过流式细胞术分析细胞周期(G2/M期阻滞)和细胞凋亡(Annexin V/PI染色);通过蛋白质印迹法检测凋亡标志物(cleaved PARP1, cleaved Caspase-3)。 4. 重要发现:GSK3i(LY2090314和CHIR99021 HCl)与五种不同的PARPi(包括国产新药Simmiparib)在HCT-15细胞中均显示协同作用,其中与Simmiparib的协同效应最强。该协同作用在多种BRCA功能正常的结直肠癌细胞中广泛存在,但在BRCA1缺陷的HCC1937细胞中较弱。联合处理显著诱导了G2/M期阻滞和细胞凋亡。

流程三:明确GSK3β的关键作用及其对DNA损伤剂的敏感性谱 1. 研究目标:确定GSK3的两个亚型(α和β)中哪个是关键作用靶点,并探索GSK3β缺陷细胞对哪些类型的DNA损伤剂更敏感。 2. 研究方法: * 基因敲除模型:利用CRISPR/Cas9技术在HCT-15和RKO细胞中分别构建了GSK3α和GSK3β的基因敲除(KO)细胞系。 * 敏感性测试:检测KO细胞对PARPi Simmiparib的敏感性变化。 * 药物谱测试:测试GSK3i或GSK3β KO细胞对不同DNA损伤剂(伊立替康、羟基脲、阿霉素、依托泊苷)的敏感性,并计算CI值。 3. 核心发现:GSK3β的缺失(而非GSK3α)使癌细胞对PARPi Simmiparib的敏感性提高了高达60倍。同时,GSK3β抑制或缺失选择性地增加了细胞对拓扑异构酶I抑制剂(伊立替康)和DNA合成抑制剂(羟基脲)的敏感性,但对拓扑异构酶II抑制剂不敏感。这提示GSK3β的缺失可能特异性地影响由复制压力(Replication Stress)引发的DNA双链断裂(DSBs)的修复。

流程四:探究协同作用的分子机制——诱导同源重组缺陷 1. 研究目标:从细胞和分子层面阐明GSK3β抑制如何与PARPi产生协同。 2. 实验方法与分析: * DNA损伤与复制压力标志物检测:通过蛋白质印迹和免疫荧光检测γ-H2AX(DSBs标志)、p-RPA32(S33, S4/S8)和p-CHK1(复制压力标志)的水平及核内焦点形成。 * 有丝分裂异常观察:通过免疫荧光染色观察纺锤体和中心体,评估联合用药是否导致后期染色体桥、多极纺锤体等异常。 * 同源重组修复能力直接测定:使用DR-U2OS报告细胞系,通过流式细胞术定量检测由I-SceI内切酶诱导的DSBs后,通过HRR途径修复并产生GFP信号的细胞比例。 * 非同源末端连接修复能力测定:使用NHEJ-HeLa报告细胞系进行类似测定。 * HRR关键蛋白募集观察:通过免疫荧光检测Rad51焦点形成(HRR功能执行的关键步骤)。 3. 机制阐明:联合抑制GSK3β和PARP导致DNA损伤(γ-H2AX↑)和复制压力(p-RPA32, p-CHK1↑)标志物显著增加。联合用药还导致有丝分裂异常比例显著升高。最重要的是,GSK3β的抑制或敲除特异性损害了细胞的HRR能力(报告基因GFP+细胞比例下降,Rad51焦点形成减少),但对NHEJ修复能力无影响。这直接证明了GSK3β是维持HRR功能所必需的。

流程五:阐明GSK3β调控HRR的上游分子通路 1. 研究目标:探索GSK3β如何调控HRR,特别是对关键蛋白BRCA1的影响。 2. 研究方法: * HRR通路蛋白表达分析:通过蛋白质印迹检测GSK3β KO细胞或用GSK3i处理后,多种HRR相关蛋白(BRCA1, RAD51, MRE11等)的表达变化。 * 功能回复实验:在GSK3β KO细胞中回补野生型或激酶失活突变型(Y216F)的GSK3β,观察BRCA1蛋白水平能否恢复。 * 转录水平分析:通过实时定量PCR检测BRCA1 mRNA水平的变化。 * 蛋白降解途径探索:使用蛋白酶体抑制剂MG-132处理,判断BRCA1下调是否源于蛋白降解加速。 * 上游信号通路探索:基于文献线索,研究Wnt3a/GSK3β/Slug/Snail轴是否参与调控BRCA1。通过过表达Wnt3a、敲低Slug或Snail等实验进行验证。 * BRCA1的功能必要性验证:在BRCA1缺陷的UWB1.289细胞及其BRCA1修复型细胞中,测试组合疗效的差异;在HCT-15和RKO细胞中敲低BRCA1,观察其对组合协同效应的影响。 3. 通路解析:GSK3β的抑制或缺失特异性地降低了BRCA1的mRNA和蛋白水平,而对其他HRR蛋白影响不一。这种调控依赖于GSK3β的激酶活性,且非通过蛋白酶体降解途径。进一步研究发现,GSK3β的失活上调了转录抑制因子Slug和Snail的表达,而敲低Slug或Snail能够恢复GSK3β缺陷细胞中的BRCA1水平,表明GSK3β通过Wnt3a/GSK3β/Slug/Snail轴转录抑制BRCA1。功能实验证实,BRCA1的存在对GSK3i与PARPi的强协同效应至关重要。

流程六:体内药效学验证 1. 研究目标:在动物模型中验证GSK3i与PARPi联用的抗肿瘤效果及安全性。 2. 实验模型:建立BRCA2缺陷的HCT-15细胞和BRCA功能正常的RKO细胞的裸鼠皮下移植瘤模型。 3. 给药方案:设置溶剂对照组、Simmiparib单药组、LY2090314单药组及联合用药组,隔天给药,持续14天。 4. 评价指标:定期测量肿瘤体积和体重;实验结束后称量瘤重;取肿瘤组织进行蛋白质印迹和免疫组化分析,检测BRCA1、γ-H2AX和cleaved Caspase-3等标志物。 5. 补充实验:使用HCT-15亲本细胞及其GSK3β KO细胞分别构建移植瘤模型,观察Simmiparib单药对两组肿瘤生长的影响。 6. 体内结果:联合用药组显著抑制了HCT-15和RKO移植瘤的生长,且效果优于任一单药,同时未引起小鼠体重明显下降,表明耐受性良好。肿瘤组织分析显示,联合组或GSK3β KO肿瘤中BRCA1蛋白下调,DNA损伤(γ-H2AX)和细胞凋亡(cleaved Caspase-3)标志物上调,与体外机制一致。

第四, 主要研究结果及其逻辑关系 本研究的结果环环相扣,逐步深入: * 结果1(筛选与验证):高通量筛选发现GSK3i与PARPi在耐药模型中协同作用最强,并通过多细胞系、多PARPi验证了协同作用的广泛性和强度。这引出问题:为什么是GSK3?其哪个亚型是关键? * 结果2(靶点确认):基因敲除实验证明GSK3β(而非GSK3α)是介导协同作用的关键蛋白,且GSK3β缺陷细胞对引发复制压力型DSBs的药物(PARPi、拓扑异构酶I抑制剂)敏感。这提示GSK3β可能参与维持基因组稳定性,特别是复制压力下的DNA修复。 * 结果3(机制核心):一系列DNA损伤与修复检测证实,GSK3β抑制或缺失特异性损害了细胞的HRR能力,而对NHEJ无影响。这完美解释了“合成致死”的机制:PARPi诱导的损伤需要HRR来修复,GSK3β抑制使细胞陷入“HRR缺陷”状态,从而对PARPi极度敏感。 * 结果4(分子通路):机制研究向下游延伸,发现GSK3β通过其激酶活性,调控转录抑制因子Slug/Snail,进而负向调控HRR核心蛋白BRCA1的转录表达。功能回复与敲低实验证实了BRCA1在此通路中的枢纽地位。这构建了完整的信号轴:抑制GSK3β → 上调Slug/Snail → 抑制BRCA1转录 → HRR功能缺陷 → 对PARPi等药物敏感。 * 结果5(体内验证):动物实验最终证明了该组合策略在活体内的有效性和安全性,并将体外发现的分子标志物变化(BRCA1↓, γ-H2AX↑)与体内抗肿瘤效果关联起来,完成了从理论到实践的证据链闭环。

第五, 研究结论与价值 结论:本研究系统性地发现并证实了GSK3β抑制与PARP抑制在结直肠癌中的强效协同抗肿瘤作用。其核心机制在于GSK3β是维持HRR功能的关键调节因子,抑制GSK3β可通过Wnt3a/GSK3β/Slug/Snail轴下调BRCA1表达,从而诱导癌细胞产生“HRR缺陷”状态。这种“诱导性HRR缺陷”使得原本对PARPi耐药或敏感的BRCA2缺陷/BRCA功能正常的结直肠癌细胞对PARPi变得高度敏感。

科学价值: 1. 揭示了GSK3β在DNA损伤修复中的新功能:明确了GSK3β,而非GSK3α,在维持HRR通路完整性中的关键作用,拓展了人们对GSK3β生物学功能的认识。 2. 阐明了新的信号调控通路:揭示了GSK3β通过转录调控BRCA1影响HRR的具体分子路径(Wnt3a/GSK3β/Slug/Snail-BRCA1轴),为理解肿瘤细胞DNA修复网络的调控提供了新视角。 3. 提出了克服靶向耐药的新策略:提供了一种通过药物组合“诱导”HRR缺陷来克服或规避PARPi原发性耐药、并拓宽其适应症(至HRR功能正常肿瘤)的创新性治疗思路。

应用价值: 1. 为临床治疗提供新方案:研究支持将GSK3抑制剂与PARP抑制剂(特别是Simmiparib)联合用于治疗结直肠癌的临床开发。该策略可能惠及更广泛的患者群体,包括BRCA2突变型和BRCA野生型患者。 2. 指导生物标志物开发:研究提示BRCA1、Slug/Snail的表达水平可能作为预测该联合疗法疗效的潜在生物标志物。 3. 推动药物研发:为GSK3抑制剂(单药疗效有限)的临床应用找到了一个有潜力的新方向,即作为PARPi等药物的“增敏剂”。

第六, 研究亮点 1. 系统性研究设计:从大规模无偏筛选出发,经过靶点确认、机制深挖、通路解析到体内验证,研究路径完整,逻辑严密,证据充分。 2. 重要的机制发现:首次系统阐明了GSK3β通过调控BRCA1转录维持HRR功能,并详细描绘了其上游调控网络,是该研究最核心的创新点。 3. 明确的转化医学意义:不仅停留在机制探讨,更通过体内实验强力支持了“GSK3i + PARPi”这一组合疗法的临床转化潜力,为后续临床试验奠定了基础。 4. 对国产新药的关注:研究中重点评估了我国自主研发的PARP抑制剂Simmiparib,发现其在该组合中表现出优异的协同效应,体现了支持本土创新药物研发的视角。 5. 对肿瘤异质性的考量:研究在不同遗传背景(BRCA状态不同)的多种结直肠癌细胞系中验证了协同效应,并发现了该策略在BRCA1缺陷与BRCA2缺陷/野生型肿瘤中可能存在的疗效差异,提示了精准应用的方向。

第七, 其他有价值内容 1. 耐药模型的代表性:研究选取的HCC1937和HCT-15细胞是学术界公认的具有原发性PARPi耐药特征的模型细胞,增强了筛选结果的临床相关性。 2. 多维度的机制证据:研究综合运用了报告基因系统、免疫荧光焦点计数、有丝分裂形态学观察、蛋白与mRNA水平检测等多种技术,从功能、形态、分子多个层面提供了相互印证的坚实证据。 3. 对协同强度的量化比较:研究不仅定性地证明了协同,还通过CI值、敏感性倍数等指标对不同PARPi、不同GSK3i的组合强度进行了量化比较,为后续药物选择提供了参考。 4. 安全性初步评估:体内实验中,联合用药未导致小鼠体重显著下降,初步提示了该组合方案具有良好的耐受性窗口,这是推进临床研究的重要前提。

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