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一个63核苷酸短元件促进高效环状RNA翻译

期刊:biorxivDOI:10.1101/2025.05.13.653105

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一、研究团队与发表信息

本研究由意大利多所顶尖科研机构合作完成,通讯作者为Irene Bozzoni(来自意大利技术研究院Fondazione Istituto Italiano di Tecnologia (IIT)及罗马大学Sapienza University of Rome)和Gaia Di Timoteo(罗马大学)。研究团队还包括Martina Chiara Biagi、Andrea Giuliani等作者。论文于2025年5月16日以预印本形式发布于bioRxiv,DOI编号为10.11012025.05.13.653105,目前尚未经过同行评审。


二、学术背景与研究目标

科学领域与背景知识

研究聚焦于环状RNA(circular RNA, circRNA)的翻译机制优化。circRNA是一类首尾共价闭合的非编码RNA,因其结构稳定、抗外切酶降解的特性,在基因调控和疾病治疗中具有潜力。然而,其无帽翻译(cap-independent translation)效率低,且长链circRNA的大规模生产困难,限制了其临床应用。

研究动机与目标

此前,circRNA翻译依赖长链内部核糖体进入位点(IRES,600-800核苷酸)或化学修饰,但这类方法存在效率与规模化瓶颈。本研究旨在鉴定更短的翻译调控元件,以提升circRNA的翻译效率,并解决其作为治疗药物的技术障碍。


三、研究方法与流程

1. 载体构建与元件筛选

  • 核心载体:采用p-circ-3xF质粒(含3xFlag标签的GFP开放阅读框),通过反向PCR线性化后,插入不同IRES(如EMCV、CVB3病毒IRES和人类VCIP IRES)或翻译增强元件(TEEs)。
  • 新型短元件设计:基于已知的13核苷酸(13-mer)TEE核心序列,结合β-珠蛋白UTR片段或内源性circZNF609的UTR片段,构建了63核苷酸的复合元件(13-UTR3)。
  • 实验对照:设置线性RNA(含帽结构)与空载体对照,比较翻译效率。

2. 细胞模型与转染

  • 细胞系:使用横纹肌肉瘤细胞(RD)和神经母细胞瘤细胞(SK-N-BE),分别模拟肌肉和神经组织环境。
  • 转染条件:通过脂质体转染2.5 μg质粒,48小时后收集细胞进行RNA和蛋白分析。

3. 翻译效率评估

  • RNA水平检测:通过qPCR定量circRNA及其前体,标准化至GAPDH或ACTB内参。
  • 蛋白水平检测:Western blot检测Flag标签蛋白,定量翻译产物。
  • 稳定性测试:用α-鹅膏蕈碱(α-amanitin)抑制转录,比较circRNA与线性RNA的半衰期。

4. 数据分析

  • 统计方法:采用双尾t检验比较不同元件的翻译效率(蛋白/RNA比值),显著性阈值设为*p<0.05*。

四、主要研究结果

1. 短元件的高效翻译能力

  • VCIP IRES优于病毒IRES:在RD细胞中,人类VCIP IRES的翻译效率比EMCV高2倍(*p<0.01*),且circRNA产量更高(图1B)。
  • 13-UTR3元件的突破性表现:63核苷酸的13-UTR3组合(13-mer + circZNF609 UTR3片段)比VCIP IRES效率提升1.5倍(*p<0.001*),且circRNA产量增加3倍(图1G)。

2. 翻译效率的ORF与细胞类型无关性

  • 跨ORF验证:在circZNF609的ORF中,13-UTR3驱动双起始密码子(35 kDa和30 kDa蛋白)的翻译效率均显著高于天然UTR(图2A)。
  • 跨细胞验证:在SK-N-BE神经细胞中,13-UTR3仍保持最高翻译活性(图2B),证明其普适性。

3. circRNA的稳定性优势

  • 线性RNA在24小时内降解70%,而circRNA保持稳定(图1F),支持其作为长效治疗载体的潜力。

五、研究结论与价值

科学意义

  • 短翻译元件的发现:63核苷酸的13-UTR3解决了长链IRES的空间限制,为circRNA设计提供了更灵活的框架。
  • 机制创新:首次证明TEE与内源性UTR片段协同增强circRNA翻译,拓展了非编码RNA的功能认知。

应用价值

  • 治疗载体优化:短元件可容纳更长的治疗性ORF(如抗体或疫苗抗原),推动circRNA在肿瘤、神经疾病和传染病(如COVID-19疫苗)中的应用。
  • 生产可行性:短circRNA更易体外合成,降低工业化生产成本。

六、研究亮点

  1. 最小化调控元件:63核苷酸的13-UTR3是迄今报道的最短高效circRNA翻译驱动元件。
  2. 多模型验证:在肌肉和神经细胞中均证实效率,支持其跨组织适用性。
  3. 稳定性与效率平衡:克服了传统线性RNA半衰期短与翻译效率低的双重瓶颈。

七、其他重要内容

  • 潜在优化方向:未来可通过高通量筛选进一步优化UTR spacer,或结合m6A修饰(m6A modification)提升翻译效率。
  • 伦理与安全:研究未涉及体内实验,后续需评估circRNA的免疫原性和毒性。

(报告总字数:约1800字)

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