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CRISPR技术在基因组编辑中的应用及其改进策略

期刊:ScienceDOI:10.1126/science.1232033

类型a:

CRISPR基因编辑技术的特异性优化及其在免疫信号传导中的新发现

作者及机构
本研究报告由来自University of Texas Southwestern Medical Center的Jiaxi Wu、Lijun Sun、Xiang Chen等团队完成,Howard Hughes Medical Institute的Zhijian J. Chen教授为通讯作者。研究于2013年2月15日发表在《Science》期刊上。

学术背景
研究聚焦两大领域:
1. CRISPR-Cas9基因编辑工具的优化:针对其脱靶效应(off-target effects)和毒性问题,探索通过生物信息学筛选同源蛋白(homologs)、定向进化(directed evolution)及结构域失活等策略提升特异性。
2. 先天免疫信号传导机制:发现胞质DNA(cytosolic DNA)通过环鸟苷酸-腺苷酸(cyclic GMP-AMP, cGAMP)作为第二信使激活STING通路,诱导I型干扰素(type I interferons)产生的分子机制。

研究背景基于以下关键问题:
- CRISPR虽高效,但临床应用受限于脱靶风险;
- 胞质DNA(如病毒DNA)如何触发免疫应答尚不明确,传统RNA聚合酶III途径无法解释非AT富集序列的激活现象。

研究流程

  1. CRISPR特异性优化实验

    • 同源蛋白筛选:通过生物信息学分析不同Cas9同源蛋白的PAM(protospacer adjacent motif)需求,扩展靶序列范围。
    • 定向进化:对核酸酶结构域进行突变筛选,获得高特异性变体。
    • 结构域失活:失活Cas9的RuvC或HNH结构域(nuclease domains),提高同源重组(HR)与非同源末端连接(NHEJ)效率比,降低毒性(图S1a, S3)。
  2. cGAMP的发现与功能验证

    • 体外激活实验:用L929-shSTING细胞胞质提取物与DNA(如herring testis DNA)孵育,加热灭活蛋白后,上清液仍可激活渗透化THP1细胞中的IRF3二聚化(图1b-c),证明存在非蛋白性热稳定因子。
    • 质谱鉴定:通过纳米液相色谱-质谱(nano-LC-MS)鉴定活性成分为cGAMP(m/z 675.1, z=1+;图2a-d),其MS/MS谱与化学合成cGAMP一致(图2d)。
    • 功能验证
      • 剂量效应:低至10 nM的cGAMP即可诱导IFN-β表达(图3a-c)。
      • 病毒诱导:HSV-1感染(非VSV)触发细胞内cGAMP生成(图3d-g)。
      • STING依赖:敲除STING的细胞对cGAMP无响应(图4a-c);UV交联实验证实cGAMP直接结合STING(图4d),且结合位点与c-di-GMP重叠(图S5)。

主要结果
1. CRISPR优化
- 失活单个核酸酶结构域可提高HR/NHEJ比率,双结构域失活使Cas9转为可编程DNA结合蛋白。
- 同源蛋白和定向进化成功扩展靶向序列范围。

  1. cGAMP的免疫调控作用
    • 必要性:DNA转染或HSV-1感染后,cGAMP生成早于IRF3激活(图3f)。
    • 特异性:仅DNA(非RNA)刺激触发cGAMP合成(图1d)。
    • 跨物种保守性:小鼠(L929、BMDM)和人类(THP1)细胞均具cGAMP合成能力,而HEK293T细胞缺陷(图1g)。

结论与价值
1. 科学意义
- 首次在真核生物中发现cGAMP作为第二信使,揭示了胞质DNA-STING通路的核心机制。
- 为CRISPR的临床安全应用提供优化策略(如结构域工程化)。

  1. 应用价值
    • cGAMP可作为疫苗佐剂或免疫治疗分子;
    • CRISPR特异性改进推动基因治疗(如ex vivo和in vivo疗法)发展。

研究亮点
1. 方法创新
- 开发非侵入性cGAMP活性检测法(热稳定因子+渗透化细胞模型);
- 结合生物信息学与定向进化优化CRISPR。

  1. 发现创新
    • 揭示cGAMP-STING轴为抗DNA病毒免疫的关键;
    • 证实CRISPR结构域失活可调控修复路径选择。

其他价值
研究还发现cGAMP合成酶(后续被命名为cGAS)的活性依赖ATP和GTP(图S4b),为2014年cGAS的发现奠定基础。专利声明显示部分成果已申请专利(G.M.C.和P.M.),凸显其转化潜力。


(注:因篇幅限制,部分细节如参考文献及补充图表未展开,实际报告中需补充。)

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