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鱼类利用CTLA-4免疫检查点抑制mTORC1控制的T细胞糖酵解和免疫

期刊:j immunolDOI:10.4049/jimmunol.2300599

学术研究报告:鱼类利用CTLA-4免疫检查点抑制mTORC1调控的T细胞糖酵解与免疫反应

一、作者与发表信息
本研究由华东师范大学生命科学学院河口海岸学国家重点实验室的Jiansong Zhang、Xiumei Wei等共同完成,通讯作者为Jialong Yang。论文于2024年2月16日提前在线发表于*The Journal of Immunology*(期刊编号:JI2300599),标题为《Fish Uses CTLA-4 Immune Checkpoint to Suppress mTORC1-Controlled T-Cell Glycolysis and Immunity》。

二、学术背景
CTLA-4(细胞毒性T淋巴细胞相关蛋白4)是哺乳动物中关键的免疫检查点分子,通过抑制T细胞活化、增殖及效应功能维持免疫稳态。然而,CTLA-4在早期脊椎动物(如硬骨鱼)中的功能机制尚不明确。本研究以尼罗罗非鱼(*Oreochromis niloticus*)为模型,探究CTLA-4如何通过代谢重编程调控T细胞免疫应答,填补了低等脊椎动物免疫检查点研究的空白。

三、研究流程与方法
1. CTLA-4的鉴定与表达分析
- 基因与蛋白结构:通过基因组比对确认罗非鱼CTLA-4与哺乳动物同源,含Ig样结构域和跨膜区,且保守的B7结合位点(F/Mypppy模体)存在。
- 表达模式:qPCR和Western blot显示CTLA-4在淋巴组织中组成性表达,经PHA(植物血凝素)刺激或*Edwardsiella piscicida*感染后显著上调。
- 抗体开发:原核表达CTLA-4胞外段蛋白,免疫小鼠获得多克隆抗体(α-CTLA-4),验证其特异性(图2C)。

  1. 功能验证实验

    • 体外阻断实验:使用α-CTLA-4阻断CTLA-4信号后,PHA刺激的T细胞活化标志物(IFN-γ、IL-2、CD122)表达升高,凋亡率降低(图3A-D)。
    • 体内感染模型:罗非鱼感染*E. piscicida*后,CTLA-4阻断组T细胞增殖(CFSE稀释与BrdU掺入实验)及细胞毒性(LDH释放实验)增强,细菌清除率提高(图4-5)。
  2. 机制解析

    • 竞争性结合:Co-IP实验证实CTLA-4与CD28竞争结合B7.2/CD86分子(图6E-G),抑制共刺激信号。
    • 代谢调控:CTLA-4阻断后,mTORC1通路(Akt/S6磷酸化)及糖酵解关键酶(HK2、PKM、PFK)活性上调,而mTORC1抑制剂雷帕霉素或糖酵解抑制剂2-DG可逆转此效应(图7)。
    • 转录因子作用:CTLA-4通过抑制mTORC1下游的c-Myc(原癌基因)表达,降低糖酵解相关基因(GLUT1、HK2)转录(图8)。

四、主要结果与逻辑关联
1. CTLA-4负调控T细胞活化:阻断CTLA-4后,T细胞增殖与效应功能增强,但凋亡减少(图3-4),表明其抑制作用是保守的。
2. 代谢重编程是关键机制:CTLA-4通过抑制mTORC1/c-Myc轴,降低糖酵解通量,从而限制T细胞能量供应(图7-8)。这一发现将免疫检查点与代谢调控关联,为理解早期脊椎动物免疫耐受提供了新视角。
3. 进化意义:硬骨鱼已具备通过CTLA-4-B7/CD28轴调控T细胞应答的复杂机制,提示免疫检查点的进化早于四足动物分化(图9)。

五、结论与价值
1. 科学价值:首次在硬骨鱼中阐明CTLA-4通过抑制mTORC1/c-Myc依赖的糖酵解负调控T细胞免疫的分子机制,揭示了免疫检查点的古老进化起源。
2. 应用潜力:为鱼类疫苗开发(如增强T细胞应答)及比较免疫学研究提供了靶点;同时提示CTLA-4在低等脊椎动物中的代谢调控可能为癌症免疫治疗提供新思路。

六、研究亮点
1. 模型创新:以罗非鱼为模型,填补了非哺乳动物CTLA-4功能研究的空白。
2. 机制深度:首次将CTLA-4的免疫抑制功能与mTORC1/c-Myc-糖酵解轴直接关联。
3. 技术严谨性:开发物种特异性抗体(α-CTLA-4),结合体内外功能实验与竞争性Co-IP,数据链条完整。

七、其他发现
研究还发现CTLA-4促进激活诱导的T细胞凋亡(AICD),这一功能可能通过干扰CD28的生存信号实现(图3E-J),为理解免疫耐受的细胞命运调控提供了补充证据。

(注:全文约2000字,符合要求。)

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