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HIF-1α诱导组织驻留肺泡巨噬细胞的糖酵解重编程,以促进急性肺损伤期间的细胞存活

期刊:eLifeDOI:10.7554/eLife.77457

伍兹(Parker S Woods)等人的研究“HIF-1α induces glycolytic reprograming in tissue-resident alveolar macrophages to promote cell survival during acute lung injury”发表于期刊《eLife》(2022年7月13日发表)。该研究由芝加哥大学医学部肺科与危重症医学科的Gökhan M Mutlu实验室主导,联合芝加哥大学急诊医学部的研究者共同完成。

一、研究背景

这项研究聚焦于急性呼吸窘迫综合征(ARDS)背景下的免疫代谢学。组织驻留肺泡巨噬细胞(TR-AMs)是长期居住在肺泡腔内的巨噬细胞亚群,对维持肺部稳态和抵御病原体至关重要。肺泡微环境具有高氧分压和低葡萄糖浓度的独特特征。该团队此前的研究已证实,在稳态条件下,TR-AMs并不依赖糖酵解(glycolysis)供能,而是主要依靠线粒体氧化磷酸化来执行其效应功能,这与骨髓来源的巨噬细胞(BMDMs)截然不同。

在ARDS等严重肺部疾病中,肺泡微环境发生剧变,肺泡腔因水肿液充盈而出现严重缺氧,同时伴随葡萄糖浓度升高。临床上,ARDS的严重程度和死亡率与TR-AMs的进行性丧失密切相关。目前尚不清楚这种微环境变化,尤其是局部氧浓度下降,如何影响TR-AMs的代谢与功能,以及TR-AMs的死亡是否与其代谢适应失败有关。本研究旨在探究TR-AMs在缺氧条件下是否会发生代谢重编程,这一过程是否依赖于缺氧诱导因子1-α(HIF-1α),以及促进这种代谢适应能否提高TR-AMs的存活率并减轻急性肺损伤。

二、研究流程与详细方法

该研究采用了体外细胞实验与体内动物模型相结合的策略,主要分为五个阶段。

第一阶段是体外原代细胞培养与缺氧模型的建立。研究者从6-8周龄的C57BL/6J小鼠体内,通过支气管肺泡灌洗获取原代TR-AMs,并通过在巨噬细胞集落刺激因子(M-CSF)存在下培养骨髓细胞获得BMDMs。随后,将两种细胞置于一个可精确控制氧气浓度的密闭缺氧工作站中,暴露于21%(常氧)至1.5%的不同氧浓度下,通常是过夜培养16小时,以模拟不同程度的低氧环境。

第二阶段是细胞生物能量代谢与表型的检测。研究者利用Agilent Seahorse XF24细胞外通量分析仪,通过糖酵解压力测试和线粒体压力测试,实时测量细胞的细胞外酸化率(ECAR,反映糖酵解功能)和氧气消耗率(OCR,反映线粒体呼吸功能)。同时,通过蛋白免疫印迹法检测HIF-1α、糖酵解关键酶(如HK2、LDHA)及脯氨酰羟化酶(PHD2、PHD3)的蛋白表达。为验证HIF-1α的作用,研究者在缺氧或常氧条件下,使用了HIF-1α DNA结合活性抑制剂(echinomycin)或进行了HIF-1α的小干扰RNA(siRNA)敲低。此外,还运用了RNA测序(RNA-seq)技术,全面比较了TR-AMs和BMDMs在缺氧与常氧条件下的全转录组差异。

第三阶段是效应功能的评估。研究者用脂多糖(LPS)刺激TR-AMs和BMDMs引发炎症反应。通过酶联免疫吸附测定(ELISA)和定量聚合酶链式反应(qPCR),分别检测细胞分泌的和mRNA表达的促炎细胞因子(如TNF-α, IL-6, KC, CCL-2, IL-1β)的水平。为了探究线粒体功能对效应功能的作用,他们在LPS刺激的同时加入了电子传递链(ETC)抑制剂(如rotenone或antimycin A),并比较了常氧与缺氧条件下细胞因子产生受抑制程度的差异。细胞活力则通过磺酰罗丹明B(SRB)比色法测定。

第四阶段是代谢组学分析。研究者收集了在常氧或低氧条件下,经或不经LPS处理的TR-AMs细胞,使用毛细管电泳-质谱联用技术,对细胞内的糖酵解通路中间代谢产物(如葡糖-6-磷酸、果糖-1,6-二磷酸、乳酸等)进行了靶向代谢组学分析。

第五阶段是建立流感病毒诱导的体内急性肺损伤模型并进行治疗性干预验证。研究者使用PKH26红色荧光染料在小鼠气管内预先标记TR-AMs,以区分组织驻留和后续浸润的巨噬细胞。然后,通过气管内接种流感病毒A/PR/8/34 (H1N1)建立急性肺损伤模型。在感染后第0、3、6天,通过流式细胞术(FACS)分选并收集TR-AMs和单核细胞来源的肺泡巨噬细胞(Mo-AMs),并对这些细胞进行RNA-seq分析,以追踪其在疾病进程中的代谢基因表达谱变化。为验证HIF-1α的治疗潜力,研究人员在病毒感染的同时,对一组小鼠经气管内给予了HIF-1α稳定剂FG-4592(一种脯氨酰羟化酶抑制剂,可模拟缺氧反应),而对照组给予溶媒。通过比较两组小鼠在感染后第6天的肺泡灌洗液中TR-AMs的数量、总蛋白浓度(反映肺泡通透性)和促炎细胞因子水平,以及连续监测小鼠的体重变化和存活率,来评估疗效。

三、主要研究结果与逻辑递进

体外实验结果显示,TR-AMs对缺氧高度敏感。在常氧条件下几乎无法检测到TR-AMs中HIF-1α的表达,但随着氧浓度降低,HIF-1α以剂量依赖性方式在核内稳定积累。随之,TR-AMs的糖酵解基础水平和糖酵解储备能力大幅上升,呈现出显著的糖酵解表型。这一过程需要持续的HIF-1α转录活性,因为短期(2小时)缺氧不足以引起功能性糖酵解增强,而HIF-1α抑制剂echinomycin或siRNA敲低HIF-1α均能阻断缺氧诱导的糖酵解酶表达和乳酸生成。

与此形成鲜明对比的是,BMDMs在常氧下就显示出高水平的HIF-1α和糖酵解酶蛋白,其糖酵解功能在缺氧后变化甚微。RNA-seq分析为这一差异提供了分子层面的解释:缺氧在TR-AMs中引起了741个基因的差异表达,涉及代谢、止血和免疫功能等多个通路,而在BMDMs中仅引起260个基因差异表达,且主要集中在碳水化合物代谢。这表明TR-AMs在转录组层面具有更强的缺氧响应可塑性。

在效应功能上,缺氧显著重塑了TR-AMs对LPS的细胞因子反应谱,表现为TNF-α、KC和IL-1β分泌增加,而IL-6和CCL-2分泌减少。尽管缺氧提高了TR-AMs的基础糖酵解水平,但并未改变其对LPS的急性糖酵解响应特征(即注射LPS后ECAR无快速上升),这一点也与BMDMs不同。然而,代谢组学数据显示,缺氧的TR-AMs在LPS处理后,其细胞内的多种糖酵解中间产物水平确实显著高于常氧对照,这表明糖酵解通量仍有增加,只是未以急性乳酸外排的形式表现出来。

更为关键的是,常氧条件下的TR-AMs的效应功能和细胞活力对线粒体ETC抑制剂极度敏感,而缺氧预处理则成功“挽救”了这一现象。在LPS刺激时,低剂量rotenone或antimycin A能严重抑制常氧TR-AMs的细胞因子产生,并导致高剂量抑制剂下的细胞死亡,但这些不良效应在缺氧条件下大大减弱。这有力地证明了,TR-AMs在缺氧下获得糖酵解能力,为细胞提供了一种替代性能量来源,使其具备了抵御线粒体功能障碍的代谢韧性。

体内实验进一步验证了上述发现。流感病毒感染后,小鼠TR-AMs数量随时间显著下降,而存活下来的TR-AMs的基因表达谱发生了明显转变,其氧化磷酸化相关基因表达下调,糖酵解相关基因表达上调,其代谢特征趋近于新招募的单核细胞来源巨噬细胞。这强烈暗示,只有成功完成从线粒体氧化代谢向糖酵解代谢转变的TR-AMs才能在疾病的缺氧微环境中幸存。在此逻辑基础上,研究者用FG-4592进行干预。体外实验证实,FG-4592能在不改变氧浓度的条件下,稳定TR-AMs中的HIF-1α,强力诱导糖酵解,并能模拟缺氧的保护效应,恢复ETC抑制剂下的细胞因子产生和细胞活力。在体内,与对照组相比,感染时接受单次气管内FG-4592治疗的小鼠,其TR-AMs存活数量显著增加,伴随肺泡蛋白渗漏和促炎细胞因子水平的降低,最终表现为体重下降幅度减小和生存率显著提高。

四、研究结论与价值

本研究揭示了TR-AMs具有独特的代谢可塑性,其高氧、低糖的定居环境使其HIF-1α-糖酵解轴在稳态下处于静默状态,而对缺氧信号极为敏感。当发生ARDS时,肺泡内缺氧触发HIF-1α的强烈稳定,诱导糖酵解重编程。这种代谢适应是TR-AMs在改变了的微环境(低氧、高糖)中维持细胞生存和功能的关键,而失败则导致细胞死亡。通过药物FG-4592稳定HIF-1α、模拟这一适应性过程,能够有效阻止流感诱导的急性肺损伤中TR-AMs的损失,减轻肺损伤并提高生存率。

该研究具有重要的科学和应用价值。在科学层面,它首次详尽表征了区别于单核细胞来源巨噬细胞的、TR-AMs独特的缺氧代谢反应,强调了发育起源和组织微环境对巨噬细胞免疫代谢表型的决定性影响。它将代谢模式的选择与细胞在特定微环境中的生存可能性直接联系起来。在应用层面,此项研究为治疗以ARDS为代表的急性炎症性疾病指出了新方向,即靶向HIF-1α介导的代谢重编程,可能成为一种通过“增强细胞适应力”而非单纯“抑制炎症”来改善疾病结局的新型治疗策略。

五、研究亮点

此项研究的亮点主要体现在三个方面。首先,研究对象特殊且关键,它聚焦于常年生活在特殊肺泡微环境中的TR-AMs,揭示了其不同于广泛研究的骨髓来源巨噬细胞的独特性,特别是其对缺氧的超高敏感性和广泛的转录重编程能力,挑战了以BMDMs为模型得出的普适性代谢范式。其次,机制与功能验证逻辑严密,研究不仅观察到现象,还通过抑制剂、基因敲低、代谢组学和RNA-seq等多层次手段,完整建立了“缺氧→HIF-1α稳定→糖酵解诱导→线粒体功能替代→细胞存活/功能维持”的逻辑链条,并在体内通过FG-4592的干预,从“促进适应以增加存活”这一独特角度,成功验证了其在提高生存率上的治疗潜力。最后,研究具有高度的临床相关性,成果为解释ARDS中TR-AMs丧失这一重要临床现象的机制提供了新见解,并提出了一个现成的、可转化的药物靶点或治疗策略,具有重大的转化医学潜力。

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