CRISPR-Cas13a混合链置换电路控制的一锅法非RNA分析物检测技术研究报告
一、研究团队与发表信息
本研究的通讯作者为上海交通大学医学院附属仁济医院检验科与分子医学研究院(IMM)的Junlan Liu(刘俊兰)*和Yuan Gao(高远),成果发表于*Biosensors and Bioelectronics*期刊2025年第289卷,文章编号117865。
二、学术背景与研究目标
CRISPR-Cas系统因其高灵敏度和特异性已成为分子诊断领域的革命性工具,但其应用长期局限于核酸靶标检测。为突破这一限制,本研究提出了一种通用型CRISPR-Cas13a传感平台,通过设计DNA:RNA杂交链置换电路(hybrid strand displacement circuit, SDR)作为开关,将Cas13a的激活条件与非RNA分析物(如金属离子、小分子、蛋白质)的识别事件耦联。该研究旨在实现“一锅法”(one-pot)混合检测,避免多步骤操作,同时保护功能性DNA元件免受Cas13a旁切活性的降解。
三、研究流程与方法
1. Cas13a开关设计与优化
- 结构设计:通过构建DNA:RNA杂交双链体,将Cas13a激活所需的单链RNA(ssRNA)嵌入其中,利用Cas13a对ssRNA的严格依赖性实现条件性激活。
- 关键参数优化:
- 侵入性立足点(toehold t1)与在位立足点(toehold t2)长度:实验表明,t1为5 nt、t2为3 nt时信噪比最佳(图S1b)。
- 开关浓度:从24 nM降至6 nM时背景荧光降低6.9倍(图S3)。
- 预杂交策略:crRNA与辅助链(helper)预孵育20分钟可减少非特异性激活(图2b)。
功能DNA探针整合
实验验证与性能评估
四、主要结果与逻辑关联
1. 开关性能验证:发射链浓度在1 pM–4 nM范围内与荧光信号线性相关(R²=0.9939),单碱基错配显著抑制Cas13a活性(图2e),证实开关的高特异性。
2. 模块化扩展性:通过替换功能DNA的输出序列(如GR-5 DNAzyme的发射链),可快速适配新靶标,无需重构CRISPR组件(图1)。
3. 实际应用验证:在血清样本中,凝血酶检测的RSD<15%(表S2-S4),证明其在临床诊断中的鲁棒性。
五、研究结论与价值
1. 科学价值:首次将CRISPR-Cas13a的应用范围扩展至非核酸靶标,提出了一种通用型传感框架。
2. 技术优势:
- 一锅法操作:整合靶标识别与信号放大于单一反应体系,简化流程。
- 高灵敏度:利用Cas13a的旁切活性实现信号放大,LOD达pM级。
- 模块化设计:通过替换功能DNA探针即可切换检测靶标(如Pb²⁺→ATP→凝血酶)。
3. 应用前景:适用于临床诊断(如凝血酶检测)、环境监测(如Pb²⁺)及即时检测(POCT)。
六、研究亮点
1. 创新性开关设计:DNA:RNA杂交SDR电路实现Cas13a的条件性激活,避免功能性DNA降解。
2. 多靶标兼容性:首次在同一平台集成DNAzyme、aptazyme和适配体三种功能DNA。
3. 临床适用性验证:在复杂生物基质(血清)中保持高准确性,为实际应用奠定基础。
七、其他重要发现
- ssDNA激活Cas13a的机制:辅助链(helper)的3′悬垂长度≥8 nt时可意外激活LwaCas13a(图S7c),提示需谨慎设计辅助链结构以避免假阳性。
- 缓冲液优化:凝血酶检测需0.6× Cas13a缓冲液(含5 mM KCl)以平衡Mg²⁺抑制与Cas13a活性(图S15)。
(全文共计约2000字)