CRISPR-Cas9基因编辑小鼠模型的构建及其在癌症建模中的应用
一、研究团队与发表信息
本研究由来自Broad Institute of MIT and Harvard、麻省理工学院McGovern脑科学研究所、Koch癌症综合研究所等机构的Randall J. Platt、张锋(Feng Zhang)等14位共同第一作者合作完成,通讯作者为Phillip A. Sharp和张锋。论文于2014年10月9日发表于期刊《Cell》(DOI:10.1016/j.cell.2014.09.014)。
二、学术背景与研究目标
CRISPR-Cas9是一种革命性的基因组编辑技术,但其在体细胞组织中的应用受限于递送效率和大片段转基因的包装难题。传统方法(如病毒载体)因容量限制难以同时递送Cas9蛋白和向导RNA(sgRNA),而腺病毒等高容量载体则存在免疫原性问题。本研究旨在构建一种Cre依赖的Rosa26-Cas9基因敲入小鼠模型,通过模块化sgRNA递送系统(如腺相关病毒AAV、慢病毒或纳米颗粒)实现多组织的高效基因编辑,并应用于肺癌等复杂疾病的动态建模。
三、研究流程与方法
1. Cas9小鼠模型的构建与验证
- 载体设计:将带有3×Flag标签的化脓链球菌Cas9(Streptococcus pyogenes Cas9)与eGFP通过P2A肽连接,插入Rosa26位点,并采用CAG启动子驱动表达。通过LoxP-STOP-LoxP(LSL)系统实现Cre依赖性激活(图1A)。
- 模型表征:
- 组成型表达小鼠:与β-actin Cre小鼠杂交后,Cas9在全身表达(图1B),小鼠发育正常,神经元电生理特性无异常(图1C-H)。
- 组织特异性表达:通过酪氨酸羟化酶(TH)或小清蛋白(PV)启动子驱动Cre,实现多巴胺能神经元或抑制性中间神经元的特异性Cas9表达(图1I-J)。
体外与体内基因编辑验证
肺癌多基因突变建模
四、主要结果与逻辑链条
1. 模型通用性验证:Cas9小鼠在神经元、免疫细胞和肺上皮细胞中均实现高效编辑,证明其跨组织适用性。
2. 癌症动态建模:单次AAV递送即可同时模拟KRAS激活与p53/LKB1缺失,重现肺癌突变组合的竞争性演化(图7B)。值得注意的是,大肿瘤中p53/LKB1突变富集,而KRAS G12D在小肿瘤中占主导,提示突变选择压力差异(图S5)。
五、研究结论与价值
1. 科学价值:
- 提供了一种无需重复递送Cas9的通用型基因编辑动物模型,解决了大片段转基因递送的瓶颈。
- 首次通过单一载体实现多基因协同编辑,为复杂疾病(如癌症)的机制研究提供新范式。
2. 应用价值:
- 加速了体内高通量遗传筛选(如肿瘤驱动基因鉴定)和个性化癌症模型的构建。
- 为免疫细胞功能研究(如DCs的病原体响应机制)提供了高效工具。
六、研究亮点
1. 技术创新:
- Cre依赖的Rosa26-Cas9设计实现了时空特异性编辑,避免了组成型表达的潜在毒性。
- AAV-KPL单载体整合了HDR和NHEJ(非同源末端连接)双重编辑功能。
2. 方法学突破:
- 纳米颗粒递送sgRNA(图S6-S7)拓展了非病毒载体的应用场景。
- 单细胞核分选与深度测序结合(图3H-J)提升了体细胞编辑的解析精度。
七、其他重要发现
- 肿瘤异质性分析揭示了突变组合的时空动态(图S5C-D),模拟了临床中肺癌的突变嵌合现象。
- 研究数据已上传至NCBI序列读存档(SRA,登录号PRJNA260178),载体可通过Addgene获取,小鼠品系(JAX 024857/024858)已开放共享。
(注:专业术语如“同源定向修复(HDR)”“非同源末端连接(NHEJ)”等首次出现时标注英文,实验细节及数据均引自原文图表。)