北京大学团队在《DNA Repair》发表新型基因组DNA无碱基位点均相荧光检测方法
2023年1月13日,北京大学化学与分子工程学院赵美萍教授团队在《DNA Repair》期刊(Volume 122, 103451)发表题为”A homogeneous fluorescence assay for rapid and sensitive quantification of the global level of abasic sites in genomic DNA”的研究论文。该研究开发了一种高选择性、高灵敏度的均相荧光检测系统,用于基因组DNA(genomic DNA, gDNA)中无碱基位点(apurinic/apyrimidinic sites, AP sites)的快速定量检测。
研究背景
AP位点是基因组DNA中最常见的损伤类型之一,由碱基自发水解或外源损伤因子(如烷化剂、活性氧等)引发。每天每个细胞可能产生10,000-50,000个AP位点。若未被修复,这些损伤会阻碍DNA复制和转录,导致细胞毒性和突变,与帕金森病、阿尔茨海默病及癌症等多种疾病相关。传统检测方法如醛反应探针(ARP)-ELISA和液相色谱-质谱联用(LC-MS/MS)存在耗时长(>24小时)、样本需求量大(>10 μg)、与5-甲酰胞嘧啶(5-fC)和5-甲酰尿嘧啶(5-fU)交叉反应等问题。因此,开发一种快速、高选择性的均相检测方法具有重要科学意义。
研究方法与流程
1. AP位点的共价标记
- 酶切转化:利用T4嘧啶二聚体糖基化酶(T4 PDG)将AP位点转化为3′-α,β-不饱和醛结构,显著提高反应活性。
- 探针设计:合成5′-羟胺修饰的寡核苷酸链(5′HA-L14),通过点击化学反应引入羟胺基团,经LC-MS验证修饰效率(m/z=4593.1)。
- 选择性验证:在5-fC和5-fU存在的DNA中,5′HA-L14仅与T4 PDG处理的AP位点特异性结合,交叉反应率%。
过量标记链的去除
信号放大与检测
细胞实验验证
主要结果
- 高选择性:5′HA-L14对5-fC和5-fU的区分能力显著优于传统ARP探针。
- 均相检测优势:无需分离纯化步骤,总检测时间缩短至5小时。
- 细胞应用:成功量化不同处理条件下细胞中AP位点的动态变化,如MCF-7细胞在20 mM MMS处理后AP位点达基线6.1倍。
结论与价值
该研究首次将T4 PDG介导的AP位点转化与λ exo驱动的信号放大相结合,建立了迄今最灵敏的AP位点均相检测方法。其科学价值体现在:
1. 为DNA损伤修复研究提供了高精度工具;
2. 通过终端碱基对调控λ exo活性,拓展了酶学应用场景;
3. 可适配其他糖基化酶,用于多种DNA损伤的检测。
研究亮点
- 方法学创新:首次利用T4 PDG增强AP位点标记效率,结合λ exo的序列特异性消化,实现”标记-清除-检测”一体化。
- 应用潜力:适用于临床样本中DNA损伤的生物标志物筛查,为癌症和神经退行性疾病的机制研究提供新思路。
其他价值
- 提出的λ exo/辅助链系统可推广至其他核酸混合物的选择性清除,如循环肿瘤DNA中低频突变的检测。
- 研究获中国国家自然科学基金(22174005、21974005)支持,相关数据可通过通讯作者申请获取。
(注:全文实验数据及辅助链序列详见论文Supplementary Material)