这篇文档属于类型a,即报告了一项原创性研究。以下是针对该研究的学术报告:
本研究由Qi Chen(浙江省疾病预防控制中心)、Jingshun Zhang(浙江工业大学)、Xing Ke(浙江工业大学)等多名学者合作完成,发表于《Food Additives & Contaminants: Part A》期刊,2025年1月第32卷第1期,文章标题为《Quantification of bovine β-casein allergen in baked foodstuffs based on ultra-performance liquid chromatography with tandem mass spectrometry》。
本研究属于食品过敏原检测技术领域,重点关注牛奶中主要过敏原蛋白β-酪蛋白(bovine β-casein)的定量分析。牛奶过敏是常见的食物过敏之一,β-酪蛋白作为其主要过敏原,即使微量摄入也可能引发严重过敏反应。然而,食品加工(如烘焙)可能导致蛋白质变性或与基质结合,传统检测方法(如ELISA、PCR)因依赖蛋白质溶解性或抗体特异性,难以准确检测变性后的过敏原。
开发一种基于超高效液相色谱-串联质谱(UPLC-TQ-MS/MS)的非免疫学方法,用于定量烘焙食品中的β-酪蛋白,解决以下问题:
1. 传统方法对变性蛋白的检测局限性;
2. 提高检测灵敏度和准确性;
3. 优化样品前处理流程以覆盖可溶性与不可溶性β-酪蛋白。
研究对比了三种内标(IS)策略:
- IS1:稳定同位素标记的短肽(VL*PV*PQK);
- IS2:标记的长肽(QSVLSLSQSKVL*PV*PQKAVPYPQRD),需经胰蛋白酶消化后释放IS1;
- IS3:人源β-酪蛋白(VMPVLK)。
实验结果:
- IS2表现最佳,可校正样品前处理(如消化效率)和质谱离子化过程中的变异,尤其在含鸡蛋(含胰蛋白酶抑制剂)或高油脂基质中更具优势。
传统提取法仅能检测可溶性蛋白,而烘焙后部分β-酪蛋白因变性或与基质结合变为不可溶。本研究提出悬浮消化法:
- 步骤:将样品直接与缓冲液(50 mM NH₄HCO₃)均质化,加入IS2后同步进行还原、烷基化和胰蛋白酶消化,无需预先分离可溶性蛋白。
- 优势:可同时释放可溶性与不可溶性β-酪蛋白中的特征肽段,回收率(50.8%)显著高于传统方法(<35.9%)。
此研究为食品过敏原检测领域提供了兼具创新性和实用性的技术方案,未来可推广至其他过敏原的检测体系开发。