IL-10信号通过肺间质巨噬细胞防止细菌失调驱动的肺部炎症并维持免疫稳态
一、研究背景
慢性肺部炎症(chronic lung inflammation)与纤维化(pulmonary fibrosis)的发病机制尚不明确,尤其关于肺部共生菌群(commensal microbiota)与免疫系统互作的影响缺乏深入认知。白细胞介素-10(IL-10)作为关键抗炎细胞因子,在肠道稳态中的作用已被广泛研究,但其在肺部免疫调控中的功能仍存在空白。本研究聚焦于IL-10信号缺失如何通过肺部间质巨噬细胞(interstitial macrophages, IMs)引发细菌失调(dysbiosis)驱动的炎症,并探索其与Th17细胞、单核细胞(monocytes)的协同作用机制。
二、论文来源
本研究由Seung Hyon Kim(伊利诺伊大学芝加哥分校药理学与再生医学系)、Teruyuki Sano(微生物学与免疫学系)等14位作者合作完成,于2025年5月13日发表于免疫学顶刊《Immunity》(Elsevier出版,DOI:10.1016/j.immuni.2025.04.004)。
三、研究流程与结果
a) 研究流程
1. 表型验证与模型构建
- 研究对象:
- IL-10基因敲除小鼠(IL10–/–)与野生型(WT)对照,年龄梯度(8周/16周/30周)。
- 条件性敲除小鼠:CX3CR1-Cre介导的IL10ra缺失(cx3cr1δil10ra),靶向IMs和经典单核细胞(cMs)。
- IL-10基因敲除小鼠(IL10–/–)与野生型(WT)对照,年龄梯度(8周/16周/30周)。
- 实验方法:
- 组织病理学(H&E染色、Masson三色染色)显示IL10–/–小鼠16周后出现非特异性慢性炎症(淋巴细胞浸润、支气管周围纤维化)。
- 流式细胞术(flow cytometry)量化中性粒细胞(neutrophils)、cMs、MHC II+ IMs的肺内富集。
- 创新技术:
- 双报告基因小鼠(cx3cr1gfp:il10–/–、ly6gtdtomato:il10–/–)实现IMs与中性粒细胞的时空追踪。
- 脉冲追踪实验(pulse-chase):他莫昔芬诱导的IL10ra条件性回补验证IMs的功能必要性。
- 组织病理学(H&E染色、Masson三色染色)显示IL10–/–小鼠16周后出现非特异性慢性炎症(淋巴细胞浸润、支气管周围纤维化)。
2. 机制解析
- 免疫细胞互作:
- 通过CCR2敲除(il10–/–ccr2–/–)证实cMs向单核源性IMs(mo-IMs)的分化是炎症必需步骤。
- CD4+ T细胞耗竭(anti-CD4抗体)或IL-1R阻断(anti-IL-1R抗体)显著减少Th17细胞浸润,提示IL-1β-Th17轴的核心作用。
- 通过CCR2敲除(il10–/–ccr2–/–)证实cMs向单核源性IMs(mo-IMs)的分化是炎症必需步骤。
- 微生物组分析:
- 16S rRNA测序发现IL10–/–小鼠肺部Delftia acidovorans(变形菌门)与Rhodococcus erythropolis(放线菌门)特异性扩增。
- 无菌小鼠(GF)定植实验:上述细菌通过鼻内(intranasal)或口服(oral)途径可诱导GF il10–/–小鼠肺部炎症,但SFB(分段丝状菌)无此效应。
- 16S rRNA测序发现IL10–/–小鼠肺部Delftia acidovorans(变形菌门)与Rhodococcus erythropolis(放线菌门)特异性扩增。
3. 临床关联验证
- 人类微生物组移植:健康人粪便菌群移植(HufMT)至GF il10–/–小鼠后,RNA-seq显示肺部先天免疫通路(如S100A8/9、CSF3R)显著激活,而肠道以组织修复通路为主。
b) 主要结果
IL-10缺失导致IMs功能失调:
- cx3cr1δil10ra小鼠的IMs丧失抑制炎症能力,伴随cMs(Ly6Chi)和mo-IMs(MHC IIhi)扩增(流式数据:3-5倍增加,p<0.001)。
- 组织学显示基底膜(basement membrane)胶原IV(Col IV)降解,α-SMA(肌成纤维细胞标志物)上调(免疫印迹:30周时增加2.1倍)。
- cx3cr1δil10ra小鼠的IMs丧失抑制炎症能力,伴随cMs(Ly6Chi)和mo-IMs(MHC IIhi)扩增(流式数据:3-5倍增加,p<0.001)。
微生物依赖性炎症:
- 抗生素处理(ABX)或GF条件完全阻断炎症(H&E评分下降80%),而D. acidovorans/R. erythropolis单一定植可重现病理表型(CFU检测:10^6/g组织)。
- 抗生素处理(ABX)或GF条件完全阻断炎症(H&E评分下降80%),而D. acidovorans/R. erythropolis单一定植可重现病理表型(CFU检测:10^6/g组织)。
跨器官免疫轴:
- 肠道菌群通过肠-肺轴(gut-lung axis)激活肺部Th17细胞(流式:结肠与肺中Th17同步增加1.8倍),但需IL-10缺失作为前提。
- 肠道菌群通过肠-肺轴(gut-lung axis)激活肺部Th17细胞(流式:结肠与肺中Th17同步增加1.8倍),但需IL-10缺失作为前提。
四、研究结论与价值
科学意义:
- 首次揭示IMs通过IL-10信号维持肺部共生菌群稳态,填补了IL-10在非肠道组织中的功能空白。
- 提出“细菌-IMs-Th17”三阶段炎症模型,为慢性肺病提供新机制解释。
- 首次揭示IMs通过IL-10信号维持肺部共生菌群稳态,填补了IL-10在非肠道组织中的功能空白。
应用潜力:
- 诊断标志物:D. acidovorans/R. erythropolis或可作为IL-10信号缺陷相关肺病的微生物标记。
- 治疗靶点:靶向IL-1R或特定菌群移植(如益生菌)可能干预纤维化进程。
- 诊断标志物:D. acidovorans/R. erythropolis或可作为IL-10信号缺陷相关肺病的微生物标记。
五、研究亮点
- 方法创新:结合条件性基因敲除、微生物组测序和跨器官免疫分析,建立多维度机制链条。
- 临床关联:人类菌群移植模型证实肠道微生物可驱动肺部炎症,为IBD(炎症性肠病)合并肺病变提供理论依据。
- 学科交叉:整合免疫学、微生物学和病理学,揭示组织特异性免疫调控的普适规律。
六、其他信息
- 局限性:未明确D. acidovorans/R. erythropolis的具体毒力因子,且人类样本验证有待后续研究。
- 数据公开:原始测序数据已上传至NCBI(登录号未注明)。